ПЦР Токсоплазма гондии. Анализы в г. Луганск - LDL
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00

ул. Новопромышленная, 10

График работы:
пн-пт - с 7:30 до 14:30,
сб - с 7:30 до 12:00, вс - выходной

E-mail:

ldl@ldl.su

755 Короткий номер

355 Короткий номер

+7 (959) 130 05 00

+7 (959) 599 87 55

Горячая линия

Получить результаты
Generic selectors
Exact matches only
Search in title
Search in content
Post Type Selectors
alt 0
450 ₽
Код анализа: 116
Заказать

Анализ: ПЦР Токсоплазма гондии в Луганске

Краткая История
Открытие Toxoplasma gondii связано с именами двух французских ученых. В 1908 году Шарль Николь и Луи Мансо обнаружили этого внутриклеточного паразита у грызуна гонди (Ctenodactylus gundi) в Тунисе, дав ему родовое название Toxoplasma (от греч. toxon – дуга, plasma – форма, из-за полулунной формы трофозоитов) и видовое – gondii. Однако его роль как человеческого патогена долгое время оставалась неясной. Прорыв произошел в 1937-1939 годах, когда Вольф, Коуэн и Пейдж доказали связь токсоплазмы с врожденными инфекциями у человека, описав случаи энцефалита и хориоретинита у младенцев. В 1950-х годах были описаны тяжелые проявления у иммунокомпрометированных пациентов. Полный жизненный цикл паразита, включающий кошачьих как окончательных хозяев и выделение ооцист с фекалиями, был установлен только в 1970 году Уоркром и Хатчинсоном. Диагностика токсоплазмоза долгое время базировалась на серологических методах (определение антител IgG, IgM, IgA, авидности IgG) и микроскопии (трудновыполнимая и малочувствительная). Выделение паразита путем заражения лабораторных мышей или культивирования in vitro было сложным и длительным. Появление полимеразной цепной реакции (ПЦР) в 1980-90-х годах открыло новую эру в диагностике, особенно острой и врожденной инфекции. ПЦР позволяет напрямую выявлять ДНК паразита в различных биологических материалах с высокой чувствительностью и специфичностью, что критически важно для своевременной диагностики и начала лечения в группах высокого риска (беременные, плод, иммунодефицитные пациенты).

Материал, используемый для исследования
Выбор материала зависит от формы инфекции и клинической ситуации:

  1. Амниотическая жидкость (амниоцентез):Ключевой материал для пренатальной диагностики врожденного токсоплазмоза. Забор проводится обычно после 18 недель гестации и не ранее 4 недель после предполагаемого инфицирования матери.
  2. Кровь:
    • Цельная кровь с ЭДТА:Содержит лейкоциты, в которых циркулируют паразиты при острой фазе. Основной материал для диагностики приобретенного токсоплазмоза у иммунокомпетентных и иммунокомпрометированных лиц.
    • Плазма/сыворотка:Может содержать свободную ДНК паразита, но чувствительность ниже, чем в цельной крови.
    • Периферические мононуклеарные клетки крови (ПМК):Выделенные из крови лейкоциты – альтернатива цельной крови.
  3. Ликвор (спинномозговая жидкость):Обязателен при подозрении на токсоплазмозный энцефалит (часто у ВИЧ-инфицированных) или менингоэнцефалит при врожденной инфекции.
  4. Глазная жидкость (водянистая влага, стекловидное тело):При подозрении на токсоплазмозный хориоретинит (активный очаг).
  5. Биоптаты тканей:Лимфоузлов (при лимфаденопатии), головного мозга (при энцефалите), плаценты (при исследовании причин невынашивания или внутриутробной инфекции), сердца (при миокардите), легких (при пневмонии). Требуют специальной обработки перед выделением ДНК.
  6. Моча:Может использоваться, особенно у новорожденных, но чувствительность ниже, чем у крови или ликвора.
  7. Бронхоальвеолярный лаваж (БАЛ):При подозрении на легочную форму токсоплазмоза.

Как подготовиться к анализу
Специфическая подготовка зависит от типа материала:

  1. Кровь:
    • Сдается строго натощак(8-12 часов голода). Пить чистую воду разрешено.
    • Рекомендуется сдавать утром.
    • За 1-2 дня избегать жирной пищи, алкоголя.
    • По возможности, за 10-14 дней до анализа согласовать с врачом отмену лекарств (особенно антибиотиков, противопаразитарных, иммуносупрессоров), если это не угрожает здоровью пациента. Если отмена невозможна – указать принимаемые препараты в направлении.
    • Избегать физических и эмоциональных перегрузок накануне.
    • Не курить за 1 час до сдачи.
  2. Амниотическая жидкость:Процедура амниоцентеза проводится по строгим показаниям в условиях стационара/кабинета пренатальной диагностики. Специальной подготовки пациентки не требуется, кроме психологической. Соблюдение стерильности при заборе критично.
  3. Ликвор:Получение ликвора (люмбальная, вентрикулярная пункция) – инвазивная процедура, выполняемая врачом в стационаре по строгим показаниям. Подготовка включает информированное согласие, оценку противопоказаний (внутричерепная гипертензия, коагулопатия). Специфической подготовки пациента (голод и пр.) обычно не требуется.
  4. Другие материалы (моча, БАЛ, биоптаты):Забор проводится по стандартным медицинским протоколам. Важно обеспечить стерильность контейнеров и транспортных сред, быструю доставку в лабораторию. Для биоптатов – указать тип ткани и фиксатор (если использовался, но для ПЦР предпочтительна заморозка или помещение в специальный буфер, а не формалин).

Описание данного вещества
Toxoplasma gondii – это облигатный внутриклеточный простейший паразит, относящийся к типу Apicomplexa (как малярийные плазмодии). Его жизненный цикл сложен и включает несколько стадий:

  1. Трофозоиты (тахизоиты):Быстро размножающаяся (эндодиогения) стадия, ответственная за острое распространение инфекции в организме хозяина. Имеют форму полумесяца (дуги) размером 4-8 мкм. Чувствительны к внешней среде и пищеварительным сокам. Инвазируют любые ядерные клетки млекопитающих и птиц (промежуточные хозяева). Основная мишень для ПЦР при острой фазе.
  2. Брадизоиты (в тканевых цистах):Медленно размножающаяся стадия, формирующая окруженные плотной оболочкой тканевые цисты (размер до 100 мкм) преимущественно в мышцах (скелетных, сердечной) и центральной нервной системе (мозг, сетчатка). Обеспечивает персистенцию паразита пожизненно у иммунокомпетентных хозяев. При иммуносупрессии цисты разрушаются, высвобождая брадизоиты, которые превращаются в тахизоиты, вызывая реактивацию инфекции. Содержат большое количество ДНК, но высвобождается она при разрушении цисты.
  3. Ооцисты:Продуцируются только в эпителии тонкого кишечника окончательных хозяев (представители семейства кошачьих – домашние кошки, дикие кошачьи). Выделяются с фекалиями незрелыми (неспорулированными), становясь заразными (спорулированными) через 1-5 дней в окружающей среде. Очень устойчивы, сохраняются в почве месяцами. При проглатывании промежуточным хозяином (включая человека) в кишечнике высвобождаются спорозоиты, дающие начало тахизоитной стадии. Реже выявляются в фекалиях кошек методом ПЦР.

Пути заражения человека:

  • Употребление сырого/недостаточно термически обработанного мяса (особенно баранины, свинины, оленины), содержащего тканевые цисты.
  • Проглатывание ооцист с водой, пищей, почвой, загрязненной фекалиями инфицированных кошек (через немытые руки после уборки кошачьего туалета, работы в саду, употребления немытых овощей/фруктов).
  • Вертикальная передача (трансплацентарно) от матери к плоду при первичной инфекции во время беременности.
  • При переливании инфицированной крови или пересадке инфицированных органов (редко).

Диагностика заболеваний
Токсоплазмоз – заболевание с крайне разнообразной клинической картиной:

  1. Приобретенный токсоплазмоз у иммунокомпетентных лиц:В 80-90% случаев протекает бессимптомно. При манифестации:
    • Гриппоподобный синдром (лихорадка, недомогание, миалгии).
    • Шейная или затылочная лимфаденопатия (наиболее характерно).
    • Редко: гепатит, миокардит, пневмония, энцефалит.
  2. Приобретенный или реактивированный токсоплазмоз у иммунокомпрометированных лиц (ВИЧ/СПИД, онкогематология, прием цитостатиков/иммуносупрессоров):
    • Токсоплазмозный энцефалит (ТЭ):Наиболее частая и опасная форма. Симптомы: головная боль, лихорадка, очаговые неврологические нарушения (парезы, судороги, нарушения речи, сознания), часто множественные очаги в мозге на МРТ/КТ.
    • Пневмония.
    • Хориоретинит.
    • Генерализованная инфекция.
  3. Врожденный токсоплазмоз:Риск и тяжесть зависят от срока гестации при инфицировании матери (чем раньше, тем тяжелее последствия, но риск передачи ниже; чем позже, тем риск передачи выше, но последствия легче). Проявления:
    • Классическая триада (редко): гидроцефалия, интракраниальные кальцификаты, хориоретинит.
    • Поражение ЦНС: микроцефалия, судороги, задержка психомоторного развития, умственная отсталость.
    • Поражение глаз: хориоретинит (может проявиться позже), косоглазие, слепота.
    • Генерализованные проявления: гепатоспленомегалия, желтуха, тромбоцитопения.
    • Бессимптомное течение при рождении:Риск поздних проявлений (ретинит, неврологические нарушения) до 85%.
  4. Глазной токсоплазмоз (хориоретинит):Может быть следствием врожденной (чаще) или приобретенной инфекции. Проявляется снижением зрения, болью, светобоязнью, «мушками». Характерны рецидивы.

Цель исследования
ПЦР-диагностика T. gondii решает ключевые диагностические задачи:

  1. Пренатальная диагностика врожденного токсоплазмоза:Основная и наиболее важная цель. Обнаружение ДНК токсоплазмы в амниотической жидкости (после 18 нед. гестации и через ≥4 нед. после сероконверсии матери) является прямым доказательством инфицирования плода и требует немедленного начала специфической терапии у матери и последующего лечения новорожденного. Превентивное лечение матери может снизить тяжесть последствий.
  2. Диагностика острой инфекции у беременных:При первичном заражении во время беременности ПЦР крови может подтвердить наличие паразитемии (циркуляции тахизоитов), особенно в первые недели после инфицирования, до появления серологических маркеров или при сомнительной серологии. Критически важно для оценки риска передачи плоду.
  3. Диагностика токсоплазмозного энцефалита (ТЭ) у иммунокомпрометированных:Обнаружение ДНК токсоплазмы в ликворе является высокоспецифичным (хотя и не абсолютно чувствительным) методом подтверждения ТЭ у ВИЧ-инфицированных и других лиц с иммунодефицитом, позволяя дифференцировать его от других оппортунистических инфекций ЦНС (лимфома, криптококкоз, прогрессирующая мультифокальная лейкоэнцефалопатия). Позволяет избежать диагностической биопсии мозга.
  4. Диагностика острой инфекции у иммунокомпетентных лиц:При атипичном или тяжелом течении (тяжелый мононуклеозоподобный синдром, миокардит, пневмония) ПЦР крови может подтвердить диагноз, особенно если серологический профиль неоднозначен или нет возможности отследить сероконверсию.
  5. Диагностика глазного токсоплазмоза:ПЦР внутриглазных жидкостей (водянистая влага, стекловидное тело) помогает подтвердить токсоплазмозную этиологию хориоретинита, особенно при нетипичной картине или отсутствии характерных серологических данных.
  6. Диагностика диссеминированного токсоплазмоза:Выявление ДНК в крови, ликворе, БАЛ у пациентов с тяжелым иммунодефицитом при генерализованном процессе.
  7. Контроль эффективности лечения:Снижение или исчезновение ДНК в крови/ликворе может свидетельствовать об эффективности терапии при острых формах (ТЭ, диссеминированная инфекция). Однако интерпретация требует осторожности из-за возможной персистенции ДНК.

Что значат полученные результаты

  • Положительный результат («обнаружено», «ДНК выявлена»):
    • Амниотическая жидкость:Доказательство врожденной инфекции плода. Требует немедленного начала терапии у матери и планирования лечения новорожденного. Ложноположительные результаты крайне редки при соблюдении методики и отсутствии контаминации.
    • Ликвор (у иммунокомпрометированного):С высокой вероятностью указывает на токсоплазмозный энцефалит (ТЭ). Является показанием к немедленному началу специфического лечения. Ложноположительные результаты маловероятны.
    • Кровь (цельная, ПМК):Указывает на активную паразитемию (острую фазу инфекции). У беременной – высокий риск трансплацентарной передачи. У иммунокомпетентного – подтверждение острой инфекции (при наличии клиники). У иммунокомпрометированного – может указывать на острую инфекцию или реактивацию. Возможны ложноположительные результаты из-за контаминации.
    • Внутриглазная жидкость:Подтверждает токсоплазмозную этиологию хориоретинита.
    • Другие материалы (БАЛ, биоптаты):Указывает на наличие ДНК паразита в исследуемой ткани/жидкости, что при наличии клиники подтверждает локальное поражение.
  • Отрицательный результат («не обнаружено», «ДНК не выявлена»):
    • Не исключаетинфекцию! Интерпретация всегда комплексная, с учетом клиники, серологии, эпиданамнеза и типа материала.
    • Амниотическая жидкость:Значительно снижает вероятность врожденной инфекции, но не исключает ее полностью, особенно если забор был сделан слишком рано (<4 нед. после инфицирования матери) или при низкой паразитемии у плода. Требует динамического наблюдения (УЗИ плода, серология новорожденного).
    • Ликвор:Не исключает ТЭ, особенно если пациент уже получал лечение, или при низкой концентрации ДНК, или при заборе малого объема ликвора. Диагноз ТЭ часто ставится клинически и по данным нейровизуализации при положительной серологии.
    • Кровь:Не исключает острую инфекцию. Паразитемия кратковременна (недели). Отрицательный результат возможен при позднем заборе крови, на фоне лечения, при низкой концентрации паразитов, локализованных формах (лимфаденопатия без паразитемии) или хронической инфекции (тканевые цисты не дают паразитемии).
    • Другие материалы:Отрицательный результат не исключает токсоплазмоз как причину заболевания, так как ДНК может не попасть в исследуемый образец или ее концентрация может быть ниже порога чувствительности теста.

Факторы, влияющие на результат
На достоверность ПЦР на токсоплазмоз влияют:

  1. Выбор материала и время забора:
    • Забор крови не в период паразитемии (слишком рано или поздно при острой инфекции).
    • Забор амниотической жидкости ранее 18 недель или ранее 4 недель после инфицирования матери.
    • Забор недостаточного объема материала (особенно ликвора или биоптата).
    • Неправильный выбор материала для клинической формы (например, кровь при подозрении на ТЭ вместо ликвора).
  2. Предшествующая терапия:Прием противопаразитарных препаратов (пириметамин, сульфадиазин, клиндамицин, спирамицин, атоваквон) до забора материала резко снижает чувствительность ПЦР, так как уменьшает количество паразитов и их ДНК.
  3. Стадия инфекции:
    • Хроническая латентная инфекция (только тканевые цисты) – ДНК в крови/ликворе обычно не выявляется.
    • Низкая паразитемия при острой инфекции у иммунокомпетентных.
  4. Иммунный статус хозяина:У иммунокомпетентных паразитемия контролируется быстрее и может быть кратковременной/низкой. У тяжелых иммунодефицитов паразитемия может быть высокой.
  5. Техника забора и транспортировка:
    • Нарушение стерильности (контаминация ДНК извне).
    • Неправильные условия хранения/транспортировки (необходимо +2…+8°C, заморозка для длительного хранения). Гемолиз крови может ингибировать ПЦР.
    • Использование неподходящих контейнеров/транспортных сред (например, с гепарином – ингибитор ПЦР).
  6. Лабораторные факторы:
    • Чувствительность и специфичность используемой тест-системы (мишень ДНК – чаще многокопийный ген B1 или REP-529, реже ITS1).
    • Наличие ингибиторов ПЦР в образце (гемоглобин, гепарин, слизь, белки).
    • Качество выделения ДНК.
    • Ошибки при постановке ПЦР, контаминация ампликонами.
    • Низкая концентрация ДНК паразита в образце (ниже порога детекции).
  7. Биологические вариации:Крайне редко – вариабельность мишеней ДНК у некоторых штаммов токсоплазмы.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Montoya, J. G., & Liesenfeld, O. (2004). Toxoplasmosis. The Lancet, *363*(9425), 1965-1976. (Классический обзор токсоплазмоза).
  2. Robert-Gangneux, F., & Dardé, M. L. (2012). Epidemiology of and diagnostic strategies for toxoplasmosis. Clinical Microbiology Reviews, *25*(2), 264-296. (Подробный обзор эпидемиологии и диагностики, включая ПЦР).
  3. Thulliez, P. (2001). Commentary: Efficacy of prenatal treatment for toxoplasmosis: a possibility that cannot be ruled out. International Journal of Epidemiology, *30*(6), 1315-1316. (Обсуждение пренатальной диагностики и лечения).
  4. Клинические рекомендации (протокол) «Токсоплазмоз у взрослых». Министерство здравоохранения Российской Федерации, актуальная редакция. (Российские стандарты диагностики и лечения).
  5. Romand, S., Chosson, M., Franck, J., Wallon, M., Kieffer, F., Kaiser, K., … & Thulliez, P. (2004). Usefulness of quantitative polymerase chain reaction in amniotic fluid as early prognostic marker of fetal infection with Toxoplasma gondii. American Journal of Obstetrics and Gynecology, *190*(3), 797-802. (О применении количественной ПЦР в амниотической жидкости).
  6. Bastien, P. (2002). Molecular diagnosis of toxoplasmosis. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, *96*(Suppl 1), S205-S215. (Специализированный обзор молекулярной диагностики).

 

 

Мы используем cookies для быстрой и удобной работы сайта. Продолжая пользоваться сайтом, вы принимаете условия обработки персональных данных