Архив Анализ - Страница 2 из 30 - LDL
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00

ул. Новопромышленная, 10

График работы:
пн-пт - с 7:30 до 14:30,
сб - с 7:30 до 12:00, вс - выходной

E-mail:

ldl@ldl.su

755 Короткий номер

355 Короткий номер

+7 (959) 130 05 00

+7 (959) 599 87 55

Горячая линия

Получить результаты
Generic selectors
Exact matches only
Search in title
Search in content
Post Type Selectors
alt 0

Антитела к фосфолипидам IgG+M

Краткая История:
Открытие антифосфолипидных антител (АФЛ) стало ключевым моментом в понимании целого спектра клинических состояний. Хотя отдельные случаи тромбозов или потери беременности у пациентов с системной красной волчанкой (СКВ) описывались и раньше, настоящий прорыв произошел в 1983 году, когда английский ревматолог Грэм Хьюз и его коллеги описали специфический синдром. Этот синдром, позже названный антифосфолипидным синдромом (АФС), характеризовался венозными и/или артериальными тромбозами, повторяющимися выкидышами и наличием в крови особых антител – волчаночного антикоагулянта (ВА) и антител к кардиолипину. Позднее спектр антифосфолипидных антител расширился (включая антитела к β2-гликопротеину I, протромбину и др.), а диагностические критерии АФС были четко определены (Саппоро, 1999; Сидней, 2006). Сегодня тест на АФЛ IgG/IgM – один из столбов диагностики АФС и оценки риска тромботических осложнений при других аутоиммунных заболеваниях.

Материал, используемый для исследования:
Для определения антител к фосфолипидам класса IgG и IgM используется сыворотка венозной крови пациента. Кровь берется из вены стандартным способом в вакутейнер (пробирку) без антикоагулянта или с активатором свертывания для получения сыворотки.

Как подготовиться к анализу:
Точность результата во многом зависит от правильной подготовки:

  1. Время сдачи:Идеально сдавать кровь утром, натощак (после 8-12 часов ночного голодания). Допускается легкий ужин накануне. Воду пить можно.
  2. Лекарства:Крайне важно сообщить врачу обо всех принимаемых препаратах! Некоторые лекарства могут существенно влиять на результат:
    • Антикоагулянты (Варфарин, Гепарин):Могут искажать результат, особенно при определении волчаночного антикоагулянта. Вопрос о временной отмене решает лечащий врач.
    • Противосудорожные препараты (Фенитоин), гипотензивные (Пропранолол, Гидралазин), оральные контрацептивы, Хинин, Прокаинамид, некоторые антибиотики (Пенициллин) могут давать ложноположительные результаты.
  3. Инфекции:Острые инфекционные заболевания (вирусные или бактериальные) могут вызывать транзиторное (временное) повышение уровня АФЛ. Анализ рекомендуется сдавать не ранее, чем через 2-4 недели после выздоровления, если это не критично для диагностики острого состояния.
  4. Курение и алкоголь:Исключить за 24 часа до исследования.
  5. Физическая и эмоциональная нагрузка:Избегать значительных физических нагрузок и стрессов накануне и в день сдачи крови. Перед забором крови рекомендуется 15-20 минут спокойно посидеть.
  6. Инструментальные исследования:Избегать рентгенографии, КТ, МРТ, физиопроцедур накануне исследования.

Описание данного вещества:
Антитела к фосфолипидам (АФЛ) – это гетерогенная группа аутоантител, направленных против фосфолипидов (основных компонентов клеточных мембран) или, чаще, против комплексов фосфолипидов с особыми белками плазмы крови, главным из которых является β2-гликопротеин I (β2-GPI). АФЛ относятся к иммуноглобулинам классов G (IgG), M (IgM) и, реже, A (IgA). Наибольшее клиническое значение имеют антитела класса IgG, особенно в высоких титрах.

Фосфолипиды играют ключевую роль в процессе свертывания крови, являясь поверхностью, на которой активируются многие факторы коагуляции. АФЛ, связываясь с фосфолипидами или фосфолипид-белковыми комплексами, нарушают тонкий баланс между про- и антикоагулянтными системами. Это приводит к:

  • Гиперкоагуляции (тромбофилии):Повышенной склонности к образованию тромбов в артериях и венах.
  • Акушерской патологии:Нарушениям формирования плаценты, что ведет к выкидышам (особенно во II триместре), внутриутробной гибели плода, тяжелой преэклампсии, задержке роста плода.
  • Тромбоцитопении:Снижению количества тромбоцитов.

Диагностика заболеваний:
Определение АФЛ IgG/IgM является ключевым лабораторным тестом для диагностики антифосфолипидного синдрома (АФС). Диагноз АФС ставится при наличии как минимум одного клинического критерия (тромбоз или акушерская патология) и одного лабораторного критерия (обнаружение АФЛ в сыворотке крови в средних или высоких титрах при двух и более исследованиях с интервалом не менее 12 недель). Помимо АФЛ IgG/IgM, к лабораторным критериям относятся также обнаружение волчаночного антикоагулянта (ВА) и антител к β2-гликопротеину I (β2-GPI) IgG/IgM.

Кроме первичного АФС (изолированного), АФЛ часто выявляются при:

  • Системной красной волчанке (СКВ)и других системных аутоиммунных заболеваниях (вторичный АФС).
  • Некоторых инфекционных заболеваниях (сифилис, ВИЧ, гепатиты, малярия, COVID-19) – обычно это транзиторные АФЛ, часто IgM.
  • Злокачественных новообразованиях.
  • Приеме некоторых лекарств.

Цель исследования:
Основные цели назначения анализа на АФЛ IgG/IgM:

  1. Диагностика Антифосфолипидного синдрома (АФС):Подтверждение диагноза у пациентов с рецидивирующими тромбозами (венозными, артериальными, микроциркуляторными) или акушерской патологией (повторные выкидыши, мертворождения, тяжелая преэклампсия).
  2. Дифференциальная диагностика причин тромбозов:Выявление аутоиммунной причины тромбофилии у молодых пациентов, при необычной локализации тромбов (например, церебральные вены, брыжеечные артерии), при резистентности к стандартной антикоагулянтной терапии.
  3. Дифференциальная диагностика акушерских потерь:Установление причины привычного невынашивания беременности, особенно во II триместре.
  4. Обследование пациентов с системными аутоиммунными заболеваниями (особенно СКВ):Выявление вторичного АФС для оценки риска тромбозов и своевременного начала профилактики.
  5. Контроль за течением АФС:Хотя уровень АФЛ не всегда коррелирует с активностью тромбозов, их определение в динамике (особенно высоких титров IgG) может иметь значение для оценки риска и коррекции терапии. Важно: Диагноз АФС требует подтверждения стойкого повышения АФЛ при двукратном тестировании с интервалом ≥12 недель.

Что значат полученные результаты:

  • Отрицательный результат (АФЛ IgG/IgM не обнаружены):Наличие АФС маловероятно, если нет других лабораторных критериев (ВА или анти-β2-GPI) и клинических проявлений. Однако, отрицательный результат не исключает возможности развития АФС в будущем или наличие других причин тромбозов/акушерских потерь.
  • Положительный результат (АФЛ IgG/IgM обнаружены):Требует обязательной интерпретации врачом в комплексе с клинической картиной и другими анализами (особенно ВА и анти-β2-GPI).
    • Низкий/умеренный титр:Может наблюдаться при инфекциях, приеме лекарств, у пожилых людей (как возрастная норма), при неспецифической аутоиммунной активации. Часто имеет транзиторный характер и меньшую клиническую значимость. Требует повторного исследования через 12 недель.
    • Средний/высокий титр (особенно IgG):Является лабораторным критерием АФС при наличии соответствующей клиники (тромбоз или акушерская патология). Высокие титры IgG ассоциированы с наибольшим риском тромботических осложнений и акушерской патологии.
    • Изолированный IgM:Чаще встречается при инфекциях и имеет меньшую клиническую значимость для АФС, чем IgG. Однако стойко положительный IgM также может быть критерием АФС.
    • Важность стойкости:Для постановки диагноза АФС необходимо подтвердить положительный результат при повторном исследовании через 12 недель или более. Однократное обнаружение не является диагностическим критерием.

Факторы, влияющие на результат:

  1. Инфекции:Острые вирусные и бактериальные инфекции – частая причина транзиторного ложноположительного результата (особенно IgM).
  2. Лекарственные препараты:(см. раздел «Подготовка»).
  3. Интервал между исследованиями:Для подтверждения стойкого характера (диагностика АФС) анализ должен быть повторен через 12 недель или более.
  4. Метод исследования:Наиболее точным методом является твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА, ELISA). Важно использовать качественные тест-системы. Результаты разных лабораторий могут варьироваться.
  5. Титр антител:Клиническое значение (особенно для прогноза тромбоза) имеют преимущественно средние и высокие титры IgG.
  6. Специфичность антител:Антитела, направленные против «чистых» фосфолипидов (часто возникающие при инфекциях), имеют меньшую клиническую значимость по сравнению с антителами, зависимыми от β2-GPI (наиболее специфичны для АФС).
  7. Возраст:Уровень АФЛ (особенно IgM) может умеренно повышаться у здоровых пожилых людей.
  8. Курение и гиперлипидемия:Могут влиять неспецифически.

Определение антител к фосфолипидам – сложный, но крайне важный анализ в диагностике опасного состояния – антифосфолипидного синдрома. Правильная подготовка, учет интерференций и интерпретация результата опытным врачом в контексте клинической картины являются залогом точной диагностики и назначения адекватной терапии, предотвращающей тяжелые тромботические и акушерские осложнения.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (Антитела к фосфолипидам):

  1. Miyakis S., Lockshin M.D., Atsumi T. et al. International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS). J Thromb Haemost.2006;4(2):295-306. (Международные критерии АФС).
  2. Насонов Е.Л. (ред.). Антифосфолипидный синдром. Москва: Литтерра; 2010. (Основополагающая русскоязычная монография).
  3. Garcia D., Erkan D. Diagnosis and Management of the Antiphospholipid Syndrome. N Engl J Med.2018;378(21):2010-2021. (Современный обзор диагностики и лечения).
  4. ACR Committee on Rheumatologic Care. Antiphospholipid Syndrome Practice Guideline 2019. American College of Rheumatology. (Клинические рекомендации).
  5. Пирадов М.А., Суслина З.А. (ред.). Неврология: национальное руководство. Глава «Антифосфолипидный синдром». Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2018. (Рассмотрение неврологических аспектов АФС в национальном руководстве).

 

 

HLA B27 ПЦР (предрасположенность к развитию серонегативных спондилоартритов)

Краткая История:
Генетический маркер HLA-B27 был открыт в 1973 году в ходе исследований, связанных с анкилозирующим спондилитом (болезнью Бехтерева). Ученые обнаружили, что этот специфический вариант гена HLA-B (человеческого лейкоцитарного антигена B) чрезвычайно часто встречается у пациентов с этим заболеванием по сравнению с общей популяцией. Последующие исследования подтвердили его сильную ассоциацию с целой группой воспалительных заболеваний суставов и позвоночника, позже названных серонегативными спондилоартритами (ССА). Определение HLA-B27 стало важнейшим инструментом в диагностике и оценке риска развития этих заболеваний, хотя его присутствие не является абсолютным гарантом болезни, а отсутствие – полной страховкой. Метод ПЦР (полимеразная цепная реакция) произвел революцию в детекции HLA-B27, сделав анализ высокоточным, быстрым и доступным.

Материал, используемый для исследования:

  • Основной материал: Венозная кровь (цельная кровь с антикоагулянтом ЭДТА).
  • Альтернативный материал (в некоторых лабораториях): Буккальный эпителий (соскоб со слизистой оболочки внутренней поверхности щеки).

Как подготовиться к анализу:
Подготовка к анализу на HLA-B27 методом ПЦР минимальна:

  1. Специальной диеты не требуется. Можно питаться как обычно.
  2. Рекомендуется сдавать кровь утром, натощак (после 8-12 часов ночного голодания). Допускается сдача крови днем, не ранее, чем через 4 часа после легкого приема пищи.
  3. Питьевой режим: Воду пить можно (негазированную, несладкую).
  4. Физические и эмоциональные нагрузки: За 30 минут до сдачи крови следует избегать физического перенапряжения (бег, подъем по лестнице), эмоционального возбуждения. Рекомендуется спокойно посидеть.
  5. Лекарственные препараты: Обычно не влияют на результат генетического теста. Однако ОБЯЗАТЕЛЬНО сообщите врачу, направляющему на анализ, обо всех принимаемых лекарствах. В редких случаях иммуносупрессивная терапия высокой интенсивности теоретически может влиять на экспрессию генов, но на сам генетический код – нет.
  6. Алкоголь и курение: Исключить за 24 часа до исследования.
  7. Если берется буккальный соскоб: Не есть, не пить, не жевать жвачку, не курить и не чистить зубы минимум за 1 час до забора материала.

Описание данного вещества (HLA-B27):
HLA-B27 – это не вещество, а специфический аллель (вариант) гена HLA-B, расположенного на 6-й хромосоме человека. Гены HLA (Human Leukocyte Antigens) кодируют белки главного комплекса гистосовместимости (МНС) I и II классов. Эти белки играют ключевую роль в работе иммунной системы:

  • Белки МНС I класса (к которым относится HLA-B) присутствуют на поверхности почти всех ядросодержащих клеток организма.
  • Их основная функция – презентация пептидов (фрагментов белков) изнутри клетки цитотоксическим T-лимфоцитам (Т-киллерам).
  • Т-киллеры распознают эти пептиды. Если пептид «чужой» (например, вирусный), они уничтожают инфицированную клетку. Если пептид «свой» – клетка остается нетронутой.

Считается, что аллель HLA-B27 кодирует белок, который может неправильно презентировать собственные пептиды или пептиды бактерий (особенно кишечных и урогенитальных), провоцируя аномальный аутоиммунный ответ, ведущий к хроническому воспалению в суставах, энтезисах (местах прикрепления связок и сухожилий к костям) и других тканях, что характерно для ССА.

Диагностика заболеваний:
Анализ на HLA-B27 является вспомогательным диагностическим тестом и используется в комплексе с клинической картиной, данными осмотра, визуализации (рентген, МРТ) и другими лабораторными исследованиями (например, СОЭ, С-реактивный белок, ревматоидный фактор – который при ССА обычно отрицательный, отсюда и название «серонегативные») для диагностики и дифференциальной диагностики группы серонегативных спондилоартритов (ССА), включающих:

  • Анкилозирующий спондилит (болезнь Бехтерева)
  • Реактивные артриты (включая синдром Рейтера)
  • Псориатический артрит
  • Артриты, ассоциированные с воспалительными заболеваниями кишечника (болезнь Крона, язвенный колит)
  • Недифференцированный спондилоартрит
  • Острый передний увеит (ирит)
  • Ювенильный спондилоартрит

Цель исследования:

  1. Подтверждение/Исключение диагноза ССА: Помощь в установлении диагноза при наличии характерных клинических симптомов (хроническая боль и скованность в спине воспалительного характера, боль в периферических суставах, энтезиты, увеит и др.), особенно при неясной или атипичной картине.
  2. Дифференциальная диагностика: Различение ССА от других заболеваний суставов (ревматоидный артрит, остеоартроз, инфекционные артриты), которые имеют иные паттерны поражения и не ассоциированы с HLA-B27.
  3. Оценка прогноза: У пациентов с ранними симптомами или недифференцированным артритом положительный HLA-B27 может указывать на более высокий риск развития классического анкилозирующего спондилита.
  4. Скрининг родственников: У родственников первой степени родства больных анкилозирующим спондилитом положительный HLA-B27 указывает на повышенный (но не 100%) риск развития заболевания.
  5. Объяснение этиологии увеита: При рецидивирующем остром переднем увеите выявление HLA-B27 подтверждает его вероятную связь со спондилоартритом.

Что значат полученные результаты:

  • HLA-B27 ОБНАРУЖЕН (положительный результат):
    • Указывает на наличие аллеля HLA-B27 в геноме человека.
    • Не означает, что человек обязательно болен или заболеет ССА. Распространенность HLA-B27 в популяции составляет 5-10% (зависит от этнической принадлежности), в то время как распространенность ССА гораздо ниже.
    • Значительно повышает риск развития ССА (особенно анкилозирующего спондилита и связанных с ним артритов). Риск развития анкилозирующего спондилита у носителя HLA-B27 примерно в 50-100 раз выше, чем у человека без этого аллеля.
    • При наличии клинических симптомов, соответствующих ССА, положительный HLA-B27 является важным аргументом в пользу этого диагноза.
    • Может ассоциироваться с более тяжелым течением некоторых ССА.
  • HLA-B27 НЕ ОБНАРУЖЕН (отрицательный результат):
    • Указывает на отсутствие аллеля HLA-B27 в исследуемом образце ДНК.
    • Значительно снижает вероятность диагноза анкилозирующего спондилита или других классических ССА, но не исключает его полностью. Существует понятие «HLA-B27-негативный спондилоартрит».
    • Не исключает другие формы артрита или иные причины имеющихся симптомов.

Факторы, влияющие на результат:

  1. Качество образца:
    • Кровь: Гемолиз (разрушение эритроцитов), недостаточный объем крови, неправильный антикоагулянт, неправильное хранение или транспортировка могут сделать образец непригодным для выделения ДНК.
    • Буккальный соскоб: Недостаточное количество клеток эпителия, загрязнение пищей, напитками или зубной пастой, неправильная техника забора.
  2. Технические ошибки лаборатории: Хотя ПЦР высокоточный метод, ошибки на этапах выделения ДНК, постановки реакции, амплификации или детекции продукта теоретически возможны (крайне редко при соблюдении стандартов).
  3. Очень редкие генетические вариации: Существует множество субтипов HLA-B27 (более 150), подавляющее большинство из которых ассоциированы с болезнью. Однако некоторые крайне редкие субтипы могут не определяться стандартными ПЦР-системами или не иметь ассоциации с заболеванием.
  4. Контаминация: Загрязнение образца ДНК другого человека или ампликонами (продуктами ПЦР) из предыдущих реакций может дать ложноположительный результат. Строгие меры предотвращения контаминации в лаборатории критически важны.
  5. Химеризм: Состояние, при котором в организме присутствуют клетки с разным генетическим материалом (например, после трансплантации костного мозга или переливания крови). Может дать ложноположительный или ложноотрицательный результат в зависимости от типа химеризма и времени, прошедшего после процедуры.

Заключение:
Анализ на HLA-B27 методом ПЦР – высокоинформативный генетический тест, играющий ключевую роль в диагностике и оценке риска серонегативных спондилоартритов. Интерпретация результата всегда должна проводиться врачом (ревматологом, офтальмологом, терапевтом) исключительно в контексте клинической картины пациента и данных других исследований. Положительный результат – не приговор, а важный ориентир для диагностики и наблюдения. Отрицательный результат существенно снижает вероятность классического ССА, но не исключает диагноз полностью при наличии убедительных клинических признаков.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (HLA-B27):

  1. Ревматология. Национальное руководство / Под ред. Е.Л. Насонова, В.А. Насоновой. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2021. — Глава 4. «Спондилоартриты».
  2. Клинические рекомендации «Анкилозирующий спондилит (болезнь Бехтерева)». Ассоциация ревматологов России, 2023.
  3. Практическое руководство по лабораторной диагностике аутоиммунных заболеваний / Под ред. Н.А. Мухина. — М.: Литтерра, 2019. — Глава 7. «Генетические маркеры в ревматологии».
  4. Khan, M. A. (2002). Update on spondyloarthropathies. Annals of Internal Medicine, *136*(12), 896–907. (Обзорная статья, описывающая роль HLA-B27).
  5. Brown, M. A., & Wordsworth, B. P. (2017). Genetics in ankylosing spondylitis – current state of the art and translation into clinical outcomes. Best Practice & Research Clinical Rheumatology, *31*(6), 763-776. (Современные данные о генетике, включая HLA-B27).

Лактазная недостаточность (ПЦР) буккальный эпителий

Краткая История:
Лактазная недостаточность (ЛН) – неспособность переваривать молочный сахар лактозу – известна давно, но ее генетическая природа стала понятна относительно недавно. У большинства млекопитающих активность фермента лактазы, расщепляющей лактозу, снижается после прекращения молочного вскармливания. Однако у части человеческой популяции, преимущественно в регионах с давней историей молочного животноводства, возникла и закрепилась генетическая мутация (полиморфизм), обеспечивающая сохранение высокой активности лактазы во взрослом возрасте (лактазная персистенция). В конце XX века ученые идентифицировали ключевой однонуклеотидный полиморфизм (SNP) C/T(-13910) в регуляторной области гена MCM6, расположенного рядом с геном лактазы (LCT) на 2-й хросомосоме. Генотип СС(-13910) ассоциирован с первичной взрослой гиполактазией, а генотипы CT(-13910) и TT(-13910) – с лактазной персистенцией. Разработка ПЦР-методов позволила надежно и быстро определять этот полиморфизм, ставший основным генетическим маркером первичной ЛН у взрослых.

Материал, используемый для исследования:

  • Основной материал: Буккальный эпителий (соскоб клеток со слизистой оболочки внутренней поверхности щеки). Собирается специальной стерильной цитощеткой или зондом.

Как подготовиться к анализу:
Подготовка к забору буккального эпителия проста и неинвазивна:

  1. Не есть, не пить, не жевать жвачку, не курить минимум за 1 час до процедуры. Это необходимо для предотвращения загрязнения образца остатками пищи, напитков или слюны.
  2. Не чистить зубы и не использовать ополаскиватель для рта минимум за 1 час до забора материала. Компоненты зубной пасты и ополаскивателей могут ингибировать ПЦР.
  3. Перед процедурой: Можно прополоскать рот чистой водой за 10-15 минут до забора (если не было приема пищи), но тщательно сплюнуть воду. Непосредственно перед забором материал должен быть сухим.
  4. Забор материала: Медицинский работник аккуратно проведет цитощеткой или зондом по внутренней поверхности щеки несколько раз, слегка надавливая, чтобы собрать достаточное количество слущенных эпителиальных клеток. Процедура безболезненна, может вызвать легкий дискомфорт или рвотный рефлекс у чувствительных людей.
  5. После забора: Щетка/зонд помещается в специальный контейнер со стабилизирующим раствором для транспортировки в лабораторию. Непосредственно после забора можно есть и пить.

Описание данного вещества (Ген LCT / Полиморфизм C/T(-13910)):

  • Ген LCT: Расположен на длинном плече 2-й хромосомы (2q21). Кодирует фермент лактазу-флоризингидролазу, который вырабатывается в энтероцитах (клетках слизистой) тонкого кишечника. Его основная функция – расщепление дисахарида лактозы (молочного сахара) на моносахариды глюкозу и галактозу, которые затем всасываются в кровь.
  • Полиморфизм C/T(-13910): Это замена одного нуклеотида (цитозина (С) на тимин (Т)) в позиции -13910 относительно стартового сайта транскрипции гена LCT. На самом деле этот полиморфизм находится не в самом гене LCT, а в интроне 13 соседнего гена MCM6, но он играет ключевую роль в регуляции экспрессии гена LCT.
    • Аллель С(-13910): Ассоциирован со снижением экспрессии гена LCT после периода грудного вскармливания. У гомозигот (СС) активность лактазы во взрослом возрасте очень низкая (первичная лактазная недостаточность).
    • Аллель Т(-13910): Ассоциирован с сохранением высокой экспрессии гена LCT во взрослом возрасте (лактазная персистенция). Гетерозиготы (СТ) обычно сохраняют достаточную активность лактазы для переваривания умеренного количества лактозы.

Диагностика заболеваний:
Генетический тест на полиморфизм C/T(-13910) гена LCT методом ПЦР по буккальному эпителию используется для диагностики первичной (врожденной, взрослого типа) лактазной недостаточности. Это состояние обусловлено генетически запрограммированным снижением активности лактазы, которое обычно проявляется в подростковом или взрослом возрасте. Тест не диагностирует:

  • Вторичную лактазную недостаточность: Возникает из-за повреждения слизистой тонкого кишечника (энтероцитов) при различных заболеваниях (кишечные инфекции, целиакия, болезнь Крона, лучевой энтерит, прием некоторых лекарств). Активность лактазы снижается временно и обычно восстанавливается после лечения основного заболевания.
  • Врожденную лактазную недостаточность: Крайне редкое аутосомно-рецессивное заболевание, проявляющееся с рождения тяжелой диареей при кормлении грудным молоком. Вызвано мутациями в самом гене LCT, а не полиморфизмом C/T(-13910).

Цель исследования:

  1. Подтверждение генетической причины непереносимости лактозы: Установить, являются ли симптомы непереносимости молочных продуктов (вздутие, метеоризм, диарея, боли в животе после употребления молока) следствием первичной (наследственной) лактазной недостаточности.
  2. Дифференциальная диагностика: Отличить первичную ЛН от вторичной ЛН и от других состояний, вызывающих схожие симптомы (синдром раздраженного кишечника, пищевые аллергии, целиакия).
  3. Определение генетической предрасположенности: Выявить носительство аллеля, связанного с персистенцией лактазы или гиполактазией, даже при отсутствии выраженных симптомов.
  4. Индивидуализация диеты: Получение объективного генетического обоснования для рекомендаций по ограничению или исключению лактозосодержащих продуктов из рациона.
  5. Прогноз для детей: При наличии семейного анамнеза ЛН определение генотипа у ребенка может помочь прогнозировать развитие непереносимости в будущем и корректировать питание.

Что значат полученные результаты:

  • Генотип С/С (гомозигота по аллелю С):
    • Указывает на первичную лактазную недостаточность (взрослого типа).
    • Активность фермента лактазы во взрослом возрасте очень низкая.
    • Высокая вероятность развития симптомов непереносимости лактозы при употреблении молока и молочных продуктов, содержащих лактозу.
    • Рекомендовано соблюдение безлактозной или низколактозной диеты.
  • Генотип С/Т (гетерозигота):
    • Указывает на частичную лактазную недостаточность.
    • Активность лактазы снижена, но обычно достаточна для переваривания небольших или умеренных количеств лактозы.
    • Симптомы непереносимости могут возникать при употреблении больших порций молочных продуктов или проявляться не всегда/не у всех.
    • Рекомендуется индивидуальный подбор диеты с ограничением лактозы по переносимости. Часто допустимы кисломолочные продукты (йогурт, кефир, сыры), где часть лактозы уже расщеплена бактериями.
  • Генотип Т/Т (гомозигота по аллелю Т):
    • Указывает на лактазную персистенцию.
    • Активность фермента лактазы во взрослом возрасте сохраняется высокой.
    • Отсутствует генетическая предрасположенность к первичной лактазной недостаточности. Симптомы непереносимости лактозы при этом генотипе маловероятны и, если присутствуют, требуют поиска других причин (вторичная ЛН, СРК, аллергия и др.).

Факторы, влияющие на результат:

  1. Качество образца буккального эпителия:
    • Недостаточное количество клеток: Если соскоб проведен некачественно и собрано мало клеток, выделение ДНК может быть неудачным.
    • Загрязнение: Прием пищи, напитков, жевание жвачки, курение, чистка зубов менее чем за час до забора приводят к загрязнению образца, что может помешать выделению ДНК или ингибировать ПЦР.
    • Неправильное хранение/транспортировка: Отсутствие стабилизирующего раствора, длительная транспортировка при неподходящей температуре может привести к деградации ДНК.
  2. Технические ошибки ПЦР: Хотя метод надежен, ошибки на этапах выделения ДНК, подготовки реакционной смеси, амплификации или детекции теоретически возможны (очень редко при соблюдении протоколов).
  3. Редкие генетические варианты: Стандартный тест на C/T(-13910) выявляет основной полиморфизм, ответственный за ЛН у большинства европеоидных популяций. Однако существуют другие, менее распространенные полиморфизмы (например, G/A(-22018) или полиморфизмы у представителей африканских или коренных американских популяций), которые также влияют на активность лактазы, но данным конкретным тестом не определяются.
  4. Химеризм/Мозаицизм: Присутствие в организме клеток с разным генетическим материалом (например, после трансплантации костного мозга) может дать ложный результат при исследовании буккального эпителия, если донор и реципиент имеют разные генотипы по LCT.
  5. Эпигенетические факторы: В редких случаях экспрессия гена LCT может модулироваться факторами, не затрагивающими саму последовательность ДНК, но влияющими на ее «считываемость». ПЦР на полиморфизм этого не выявляет.

Заключение:
Генетический тест на лактазную недостаточность по буккальному эпителию – это удобный, неинвазивный и высокоинформативный метод подтверждения первичной (наследственной) непереносимости лактозы. Его результаты помогают врачу (гастроэнтерологу, терапевту, диетологу) установить причину симптомов, дифференцировать первичную ЛН от вторичной и дать персонализированные рекомендации по питанию. Понимание своего генотипа позволяет осознанно управлять диетой и улучшать качество жизни.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (Лактазная недостаточность, буккальный эпителий):

  1. Шульпекова Ю.О. Непереносимость лактозы: клиника, диагностика, подходы к лечению // РМЖ. Гастроэнтерология. – 2019. – Т. 3. – № 1(I). – С. 11-17.
  2. Хавкин А.И., Комарова О.Н. Лактазная недостаточность у детей и взрослых // Лечащий врач. – 2017. – № 5. – С. 26-30.
  3. Клинические рекомендации «Синдром мальабсорбции лактозы у взрослых». Научное общество гастроэнтерологов России, 2020.
  4. Enattah, N. S., Sahi, T., Savilahti, E., Terwilliger, J. D., Peltonen, L., & Järvelä, I. (2002). Identification of a variant associated with adult-type hypolactasia. Nature Genetics, *30*(2), 233–237. (Ключевая статья об открытии полиморфизма).
  5. Mattar, R., de Campos Mazo, D. F., & Carrilho, F. J. (2012). Lactose intolerance: diagnosis, genetic, and clinical factors. Clinical and Experimental Gastroenterology, *5*, 113–121. (Обзор методов диагностики).

Лактазная недостаточность (ПЦР) кровь

Краткая История:
История понимания лактазной недостаточности и открытия ключевого генетического маркера C/T(-13910) описана в предыдущей статье (по буккальному эпителию). Определение этого полиморфизма методом ПЦР стало стандартом диагностики первичной ЛН. Изначально и наиболее часто для генетических тестов использовалась венозная кровь как источник ДНК. Кровь остается «золотым стандартом» для многих ДНК-тестов благодаря высокой концентрации и качеству выделяемой ДНК. Развитие технологий позволило использовать и альтернативные материалы, такие как буккальный эпителий, но анализ по крови сохраняет свою актуальность и высокую точность для диагностики лактазной недостаточности.

Материал, используемый для исследования:

  • Основной материал: Венозная кровь (цельная кровь, стабилизированная антикоагулянтом ЭДТА (K2 или K3 ЭДТА) в специальной вакуумной пробирке (типа «Vacuette EDTA»).

Как подготовиться к анализу:
Подготовка к сдаче крови на генетический анализ стандартна:

  1. Сдавать кровь рекомендуется утром, натощак. Период голодания должен составлять 8-12 часов (обычно ночной сон). В это время можно пить только чистую негазированную воду.
  2. Накануне исследования: Придерживаться обычного рациона, но избегать переедания и употребления очень жирной пищи. Исключить алкогольные напитки.
  3. Питьевой режим перед сдачей: Утром в день анализа можно пить воду (негазированную, несладкую).
  4. Физические и эмоциональные нагрузки: За 30 минут до сдачи крови необходимо исключить физическое напряжение (бег, быстрый подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение. Рекомендуется спокойно посидеть в процедурном кабинете.
  5. Лекарственные препараты: Обычно не влияют на результат генетического теста (так как не меняют структуру ДНК). Однако обязательно сообщите врачу, направившему вас на исследование, и процедурной медсестре о всех принимаемых лекарствах.
  6. Курение: Не курить минимум за 1 час до исследования.

Описание данного вещества (Ген LCT / Полиморфизм C/T(-13910)):
(См. подробное описание в статье по буккальному эпителию — раздел идентичен, так как исследуется тот же самый ген и полиморфизм).
Ключевой момент: Анализ выявляет однонуклеотидный полиморфизм (SNP) C/T в позиции -13910 относительно гена лактазы (LCT). Генотип СС ассоциирован с первичной лактазной недостаточностью взрослого типа, СТ — с частичной недостаточностью, ТТ — с лактазной персистенцией.

Диагностика заболеваний:
(См. раздел в статье по буккальному эпителию — назначение теста идентично).
Тест диагностирует первичную (врожденную, взрослого типа) лактазную недостаточность путем выявления генетической предрасположенности. Не диагностирует вторичную ЛН или врожденную алактазию.

Цель исследования:
(См. раздел в статье по буккальному эпителию — цели идентичны):
Подтверждение генетической причины ЛН, дифференциальная диагностика, определение предрасположенности, персонализация диеты, прогноз.

Что значат полученные результаты:
(Интерпретация генотипов СС, СТ, ТТ полностью идентична интерпретации, описанной в статье по анализу буккального эпителия).

Факторы, влияющие на результат:

  1. Качество образца крови:
    • Гемолиз: Сильное разрушение эритроцитов при заборе или транспортировке делает образец непригодным для выделения ДНК.
    • Недостаточный объем: Мало крови — мало лейкоцитов — мало ДНК.
    • Неправильный антикоагулянт: Использование пробирок не с ЭДТА (например, с цитратом или гепарином) может помешать выделению ДНК или ингибировать ПЦР.
    • Неправильное хранение/транспортировка: Кровь должна транспортироваться и храниться при рекомендованной температуре (обычно +2…+8°C) и в течение определенного срока до выделения ДНК. Замораживание цельной крови с ЭДТА нежелательно.
  2. Технические ошибки ПЦР: Аналогичны рискам при любом ПЦР-анализе (ошибки на преаналитическом или аналитическом этапе), но риск минимален в аккредитованных лабораториях.
  3. Редкие генетические варианты: Тест специфичен к полиморфизму C/T(-13910). Он не выявляет другие, менее распространенные полиморфизмы, влияющие на активность лактазы в других популяциях.
  4. Химеризм/Мозаицизм: После трансплантации костного мозга или стволовых клеток кровь пациента содержит лейкоциты донора. Если донор и реципиент имеют разные генотипы по LCT, результат анализа крови будет отражать генотип донора, а не реципиента. В этом случае анализ крови не пригоден для определения собственного генотипа пациента. Буккальный эпителий или другой тканеспецифичный материал будут более надежны. После переливания крови лейкоциты донора также временно присутствуют в кровотоке реципиента, что может исказить результат, если переливание было недавним. Рекомендуется сдавать кровь не ранее, чем через 1 месяц после последнего переливания.
  5. Очень высокий лейкоцитоз или лейкопения: Крайние значения количества лейкоцитов в крови теоретически могут затруднить выделение достаточного количества ДНК, но на практике это редко является проблемой для современных методов.

Заключение:
Анализ крови на лактазную недостаточность методом ПЦР – это высоконадежный и точный метод диагностики первичной ЛН. Он особенно важен в случаях, когда использование буккального эпителия затруднено или когда есть подозрение на химеризм (после трансплантаций). Результат предоставляет объективные генетические данные для понимания причины симптомов непереносимости молочных продуктов и формирования индивидуальной диетической стратегии.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (Лактазная недостаточность, кровь):

  1. Циммерман Я.С. Гастроэнтерология: Руководство. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2020. — Гл. «Синдромы мальдигестии и мальабсорбции».
  2. Ивашкин В.Т., Шелыгин Ю.А. (ред.) Рациональная фармакотерапия заболеваний органов пищеварения. — М.: Литтерра, 2011. — Раздел о ферментной недостаточности.
  3. Heyman, M. B. (2006). Lactose intolerance in infants, children, and adolescents. Pediatrics, *118*(3), 1279–1286. (Рассматривает диагностику, включая генетические тесты).
  4. Swallow, D. M. (2003). Genetics of lactase persistence and lactose intolerance. Annual Review of Genetics, *37*(1), 197–219. (Фундаментальный обзор генетики ЛН).
  5. Misselwitz, B., Pohl, D., Frühauf, H., Fried, M., Vavricka, S. R., & Fox, M. (2013). Lactose malabsorption and intolerance: pathogenesis, diagnosis and treatment. United European Gastroenterology Journal, *1*(3), 151–159. (Обзор современных подходов к диагностике и лечению).

Фолатный цикл (ПЦР)

Краткая История:
Фолаты (витамин B9) и связанные с ними метаболические пути (фолатный цикл) критически важны для синтеза ДНК, репарации, метилирования и других фундаментальных клеточных процессов. В 1960-70-х годах было установлено, что дефекты метаболизма фолатов, в частности повышение уровня гомоцистеина, ассоциированы с повышенным риском сердечно-сосудистых заболеваний, дефектов нервной трубки у плода и других осложнений беременности. В 1980-90-х годах были идентифицированы ключевые ферменты фолатного цикла: метилентетрагидрофолатредуктаза (MTHFR), метионинсинтаза (MTR), метионинсинтаза редуктаза (MTRR). Были открыты частые полиморфизмы в генах, кодирующих эти ферменты (особенно C677T и A1298C в гене MTHFR), которые влияют на их активность. Развитие ПЦР-технологий позволило быстро и точно определять эти генетические варианты у пациентов, открыв путь к персонализированной оценке риска и коррекции дефицита фолатов.

Материал, используемый для исследования:

  • Основной материал: Венозная кровь (цельная кровь с антикоагулянтом ЭДТА (K2 или K3 ЭДТА) в вакуумной пробирке).
  • Альтернативный материал (в некоторых лабораториях): Буккальный эпителий (соскоб со щеки).

Как подготовиться к анализу:
Подготовка аналогична подготовке к сдаче крови на генетический тест (как в анализе на ЛН по крови):

  1. Сдавать кровь рекомендуется утром, натощак (8-12 часов голодания). Пить воду можно.
  2. Накануне: Избегать пищевых перегрузок, исключить алкоголь.
  3. Физический и эмоциональный покой: За 30 минут до сдачи крови избегать нагрузок и стресса.
  4. Лекарственные препараты: Крайне важно! Многие препараты влияют на уровень гомоцистеина и фолатов в крови, но не меняют ДНК. Однако некоторые препараты (например, метотрексат, противосудорожные) могут влиять на метаболизм фолатов. Обязательно сообщите врачу обо всех принимаемых лекарствах и БАДах. Отмена препаратов обычно не требуется, но информация важна для интерпретации.
  5. Курение: Не курить минимум за 1 час до исследования (курение повышает гомоцистеин).
  6. Для буккального эпителия: Требования аналогичны тесту на ЛН (не есть, не пить, не чистить зубы за 1 час до забора).

Описание данного вещества (Фолатный цикл и ключевые гены):
Фолатный цикл – это сложная сеть биохимических реакций, в которых фолиевая кислота (витамин B9) и ее активные формы (тетрагидрофолаты, THF) участвуют:

  1. Синтез ДНК/РНК: Обеспечение переноса одноуглеродных групп для синтеза пуринов и пиримидинов.
  2. Метилирование: Перенос метильной группы (-CH3) на различные молекулы. Ключевая реакция — реметилирование гомоцистеина в метионин, катализируемое ферментом метионинсинтазой (MTR). Эта реакция требует витамина B12 (кобаламина) в качестве кофактора. Образованный метионин превращается в S-аденозилметионин (SAM) — универсальный донор метильных групп для метилирования ДНК, РНК, белков, липидов, нейротрансмиттеров.
  3. Метаболизм аминокислот: Конверсия гомоцистеина в метионин и в цистатионин (через транссульфурацию).

Ключевые исследуемые гены и полиморфизмы:

  • MTHFR (5,10-метилентетрагидрофолатредуктаза):
    • Полиморфизм C677T (rs1801133): Замена C>T в позиции 677. Генотип ТТ приводит к термолабильному варианту фермента со сниженной активностью (до 30% от нормы). Это уменьшает конверсию 5,10-метилен-THF в 5-метил-THF – основную циркулирующую форму фолата и донора метильной группы для реметилирования гомоцистеина. Результат: повышение уровня гомоцистеина (ГЦ), снижение уровня фолатов и метионина.
    • Полиморфизм A1298C (rs1801131): Замена A>C в позиции 1298. Влияние на активность фермента менее выражено, чем у C677T. Генотип СС может умеренно снижать активность MTHFR. Наибольший эффект наблюдается при комбинации 677T и 1298C аллелей в транс-положении (на разных хромосомах).
  • MTR (Метионин Синтаза, кодируется геном MTR):
    • Полиморфизм A2756G (rs1805087): Замена A>G в позиции 2756. Генотип GG (реже AG) ассоциирован со сниженной активностью фермента MTR. Это нарушает реметилирование гомоцистеина в метионин, приводя к накоплению гомоцистеина.
  • MTRR (Метионин Синтаза Редуктаза, кодируется геном MTRR):
    • Полиморфизм A66G (rs1801394): Замена A>G в позиции 66. Генотип GG (реже AG) связан со сниженной активностью фермента MTRR. MTRR необходим для восстановления кобаламина (B12) в активную форму, которая требуется ферменту MTR. Снижение активности MTRR косвенно нарушает работу MTR и повышает уровень гомоцистеина, особенно при сопутствующем дефиците витамина B12.
  • Другие гены: Иногда исследуют полиморфизмы в генах RFC1 (транспортер фолатов), TCN2 (транспортер витамина B12), CBS (цистатионин-бета-синтаза).

Диагностика заболеваний/Оценка риска:
Генетический тест «Фолатный цикл» не диагностирует конкретное заболевание, а оценивает генетическую предрасположенность к нарушениям метаболизма фолатов и гомоцистеина, что связано с повышенным риском:

  1. Гипергомоцистеинемия: Повышенный уровень гомоцистеина в крови – независимый фактор риска атеросклероза, тромбозов, сердечно-сосудистых заболеваний (инфаркт миокарда, инсульт).
  2. Осложнения беременности:
    • Дефекты нервной трубки у плода (анэнцефалия, spina bifida).
    • Невынашивание беременности (выкидыши, замершая беременность).
    • Преэклампсия, отслойка плаценты.
    • Задержка внутриутробного развития плода (ЗВУР).
  3. Венозные тромбоэмболические осложнения (ТЭЛА, тромбоз глубоких вен).
  4. Когнитивные нарушения, депрессия: Связь с нарушением метилирования в мозге.
  5. Некоторые онкологические заболевания: Нарушение синтеза и репарации ДНК.
  6. Макроцитарная анемия: Хотя чаще связана с дефицитом B12 или фолатов, генетические нарушения могут способствовать ее развитию или устойчивости к лечению.

Цель исследования:

  1. Оценка индивидуального риска развития гипергомоцистеинемии и связанных с ней патологий (ССЗ, тромбозы, осложнения беременности).
  2. Выявление причины гипергомоцистеинемии (особенно при нормальном или пограничном уровне витаминов B9/B12).
  3. Планирование беременности:
    • Оценка риска дефектов нервной трубки и других осложнений.
    • Определение необходимости и оптимальных доз приема фолиевой кислоты и других витаминов (B6, B12) до зачатия и во время беременности. Носителям неблагоприятных генотипов часто требуются высокие дозы или активные формы фолатов.
  4. Объяснение невынашивания беременности или неудач ЭКО.
  5. Персонализация профилактики сердечно-сосудистых заболеваний и тромбозов.
  6. Выбор тактики лечения при выявленной гипергомоцистеинемии (определение необходимых доз витаминов).
  7. Дифференциальная диагностика анемий.

Что значат полученные результаты:
Результат представляет собой описание выявленных генотипов по каждому исследуемому полиморфизму (например, MTHFR C677T: CT; MTHFR A1298C: AA; MTR A2756G: AG; MTRR A66G: GG). Интерпретацию обязательно должен проводить врач (генетик, гематолог, акушер-гинеколог, кардиолог, терапевт), учитывая клиническую картину, анамнез, уровень гомоцистеина, витаминов B9 и B12 в крови.

  • Наличие «рисковых» аллелей (677T, 1298C, 2756G, 66G):
    • Указывает на генетическую предрасположенность к снижению активности соответствующих ферментов фолатного цикла.
    • Повышает вероятность развития гипергомоцистеинемии, особенно при сочетании нескольких неблагоприятных аллелей или при сопутствующих факторах (дефицит витаминов B9, B6, B12 в пище; курение; болезни почек; прием некоторых лекарств; пожилой возраст; гипотиреоз).
    • Повышает риск ассоциированных патологий (ССЗ, тромбозы, осложнения беременности).
    • Требует внимания к уровню гомоцистеина и витаминов группы B. Часто необходимы дополнительные анализы (ГЦ, B9, B12).
    • Определяет необходимость превентивных мер: Назначение высоких доз фолиевой кислоты (4-5 мг/сут), активной формы фолата (метилфолат), витамина B12 (цианокобаламин, метилкобаламин), витамина B6 (пиридоксин) для коррекции потенциального метаболического дефекта и снижения ГЦ. Дозы и длительность приема определяет врач.
  • Отсутствие «рисковых» аллелей (генотипы CC для MTHFR 677, AA для MTHFR 1298, AA для MTR 2756, AA для MTRR 66):
    • Генетическая предрасположенность к нарушениям фолатного цикла по данным исследуемым полиморфизмам отсутствует или минимальна.
    • Не исключает гипергомоцистеинемию по другим причинам (дефицит витаминов, болезни почек и др.).
    • Стандартные дозы фолиевой кислоты (400 мкг/сут) обычно достаточны при планировании беременности.

Факторы, влияющие на результат:

  1. Качество образца ДНК: Те же факторы, что и для других ПЦР-тестов по крови или буккальному эпителию (гемолиз, недостаточный объем, загрязнение, неправильное хранение/транспортировка).
  2. Технические ошибки ПЦР: Редкие ошибки на этапах анализа.
  3. Ограниченный набор исследуемых полиморфизмов: Стандартные панели обычно включают MTHFR C677T, A1298C, MTR A2756G, MTRR A66G. Существуют другие, менее изученные или популяционно-специфичные полиморфизмы в этих и других генах фолатного цикла, которые могут влиять на метаболизм, но данным тестом не определяются.
  4. Химеризм (после трансплантации костного мозга/стволовых клеток): Анализ крови будет отражать генотип донора. Буккальный эпителий более надежен для определения собственного генотипа реципиента.
  5. Эпигенетика и факторы среды: Экспрессия генов фолатного цикла может регулироваться эпигенетически (метилирование ДНК, модификации гистонов). На метаболизм фолатов и гомоцистеина сильно влияют диета (поступление B9, B6, B12, метионина), образ жизни (курение, алкоголь), состояние здоровья (функция почек, щитовидной железы), прием лекарств. Генетический тест показывает предрасположенность, но не гарантирует развитие нарушений или их отсутствие. Сочетание генетики и среды определяет реальный риск.

Заключение:
Генетическое исследование полиморфизмов фолатного цикла – мощный инструмент персонализированной медицины. Оно позволяет выявить людей с повышенной потребностью в фолиевой кислоте и других витаминах группы B, спланировать эффективную профилактику серьезных осложнений (особенно при беременности), скорректировать терапию гипергомоцистеинемии и снизить риски сердечно-сосудистых и тромботических событий. Интерпретация результатов требует комплексного подхода и обязательной консультации специалиста.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (Фолатный цикл):

  1. Громова О.А., Торшин И.Ю. Фолаты и полиморфизмы генов фолатного цикла. — М.: МЦНМО, 2012. (Специализированная монография).
  2. Клинические рекомендации «Гипергомоцистеинемия». Национальное гематологическое общество, 2021 (или актуальный год).
  3. Документация по ведению беременности (Приказы Минздрава РФ) — разделы о назначении фолиевой кислоты при планировании и во время беременности, особенно у групп риска.
  4. Frosst, P., Blom, H. J., Milos, R., Goyette, P., Sheppard, C. A., Matthews, R. G., … & Rozen, R. (1995). A candidate genetic risk factor for vascular disease: a common mutation in methylenetetrahydrofolate reductase. Nature Genetics, *10*(1), 111-113. (Классическая статья о полиморфизме MTHFR C677T).
  5. Bailey, L. B., & Berry, R. J. (2005). Folic acid supplementation and the occurrence of congenital heart defects, orofacial clefts, multiple births, and miscarriage. The American Journal of Clinical Nutrition, *81*(5), 1213S-1217S. (Обзор влияния фолатов на профилактику врожденных дефектов).

Забор крови

Устали от очередей в поликлиниках? Нет времени отпрашиваться с работы? Не хотите везти маленького ребенка или пожилого родственника в лабораторию через весь город? «Лаборатория Бойченко» предлагает идеальное решение: профессиональный забор крови на дому!

Забудьте о стрессе и неудобствах! Теперь необходимые анализы можно сдать максимально комфортно и быстро, не выходя из дома.

Почему это удобно?

  • Экономия Вашего времени:Не нужно тратить часы на дорогу и ожидание в очередях. Вы занимаетесь своими делами до приезда специалиста.
  • Комфорт и безопасность:Особенно важно для малышей, пожилых людей, пациентов с ограниченными возможностями или тех, кто плохо себя чувствует. Домашняя обстановка снижает стресс и риск подхватить инфекцию в общественном месте.
  • Индивидуальный подход:Медсестра приедет в удобное для Вас время, включая раннее утро или выходные дни.
  • Профессионализм:Наши специалисты – опытные медицинские сестры, владеющие техникой безболезненного забора крови даже у самых маленьких пациентов. Мы используем только стерильные одноразовые материалы.
  • Быстро и надежно:Взятые образцы оперативно и с соблюдением всех правил транспортировки доставляются в нашу современную лабораторию для точного исследования.

Для кого это идеально?

  • Занятые люди,ценящие каждую минуту.
  • Родители маленьких детей(не нужно будить спящего младенца или уговаривать испуганного малыша ехать в незнакомое место).
  • Пожилые люди,для которых поездка в клинику – настоящее испытание.
  • Пациенты с хроническими заболеваниями,которым необходим регулярный контроль показателей крови.
  • Все, кто ценит комфорт, конфиденциальность и свое спокойствие!

Как это работает?

  1. Позвоните нам:Наберите номер +7 (959) 130-05-00.
  2. Выберите время:Согласуйте удобную дату и время визита медсестры.
  3. Встречайте специалиста:Наш сотрудник приедет точно в срок со всем необходимым оборудованием.
  4. Получайте результаты:Как обычно – Онлайн (На нашем сайте) и лично в лаборатории.

Цены на забор крови на дому остаются доступными! Уточняйте стоимость выезда и самих анализов при заказе по телефону.

Не откладывайте здоровье на потом! Сэкономьте силы, время и нервы.

Закажите выезд медсестры для забора крови на дом прямо сейчас!

Звоните: +7 (959) 130-05-00

Лаборатория Бойченко, гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Фибриноген

Краткая История
История изучения фибриногена насчитывает более двух столетий. Впервые белок, образующий сгусток, был описан в начале XIX века. Значительный вклад внес выдающийся русский хирург и ученый Николай Иванович Пирог, который в середине XIX века детально изучал процесс свертывания крови и роль фибрина. Сам термин «фибриноген» (от лат. fibra — волокно и genos — рождающий) был предложен позже для обозначения растворимого предшественника фибрина. Ключевой шаг в понимании его функции сделали в начале XX века, когда была установлена его роль как субстрата для тромбина. Разработка методов количественного определения фибриногена (прежде всего, метод Клауса, основанный на времени свертывания разведенной плазмы в присутствии избытка тромбина) стала прорывом в диагностике нарушений гемостаза. Сегодня фибриноген признан не только ключевым фактором свертывания (I фактор), но и важным белком острой фазы воспаления.

Материал, используемый для исследования

  • Тип образца:Плазма цитратная.
  • Сбор:Кровь берется из вены в специальную вакуумную пробирку, содержащую 3,2% или 3.8% раствор цитрата натрия (стандартное соотношение 9:1, кровь:цитрат).
  • Обработка:Пробирку аккуратно переворачивают для смешивания, затем центрифугируют (1500-2500 g, 10-15 минут) для получения бедной тромбоцитами плазмы (PPP).

Как подготовиться к анализу
Подготовка идентична подготовке к определению Тромбинового времени:

  1. Голодание:Сдача крови утром натощак (8-12 часов голода). Вода разрешена.
  2. Лекарства:Обязательно сообщите врачу обо всех принимаемых препаратах и добавках. Влияют: гормональные контрацептивы/ЗГТ, кортикостероиды, анаболические стероиды, некоторые противоэпилептические средства, тромболитики, аспирин (влияние незначительное), L-аспарагиназа. Врач скажет, нужна ли отмена.
  3. Алкоголь:Исключить за 24 часа.
  4. Физическая и эмоциональная нагрузка:Избегать интенсивных нагрузок и стресса накануне и в день сдачи. Отдохните 15-20 минут перед процедурой.
  5. Время суток:Предпочтительно утро.
  6. Инфекции и обострения:Сообщите врачу, так как воспаление повышает фибриноген.
  7. Курение:Не курить минимум 30 минут до забора крови.

Описание данного вещества
Фибриноген (Фактор I коагуляции) – это крупный растворимый гликопротеин, синтезируемый в печени. Он является центральным звеном в процессе свертывания крови и важным маркером воспаления.

  • Структура и синтез:Молекула фибриногена состоит из трех пар полипептидных цепей (Aα, Bβ, γ)₂, связанных дисульфидными мостиками. Синтезируется гепатоцитами, его продукция регулируется интерлейкином-6 (IL-6) и другими провоспалительными цитокинами (поэтому он — белок острой фазы).
  • Функция в гемостазе:
    1. Субстрат для тромбина:Под действием тромбина от фибриногена отщепляются фибринопептиды А и В, образуя мономеры фибрина.
    2. Образование сгустка:Мономеры фибрина спонтанно полимеризуются в нестабильные фибриновые нити.
    3. Стабилизация сгустка:Под действием активированного фактора XIII (который тоже активируется тромбином) между нитями фибрина образуются прочные ковалентные поперечные связи, формируя стабильный, нерастворимый фибриновый сгусток (тромб).
  • Функция вне гемостаза:
    • Белок острой фазы:Уровень фибриногена в крови повышается при воспалении, инфекциях, травмах, стрессе, онкологических заболеваниях как часть системного ответа.
    • Участие в репарации тканей:Фибрин формирует матрикс, способствующий миграции клеток, участвующих в заживлении ран.
    • Агрегация тромбоцитов:Фибриноген связывается с рецептором GP IIb/IIIa на активированных тромбоцитах, способствуя их агрегации.

Диагностика заболеваний
Определение уровня фибриногена в крови имеет широкое диагностическое значение:

  1. Нарушения свертываемости крови:
    • Кровоточивость:Диагностика гипо- и афибриногенемии (врожденных или приобретенных) как причины кровотечений.
    • Тромбозы:Выявление гиперфибриногенемии как независимого фактора риска артериальных тромбозов (инфаркт миокарда, инсульт).
  2. ДВС-синдром:Оценка степени потребления фибриногена (снижение уровня) в фазе коагулопатии.
  3. Тяжелые заболевания печени:Оценка синтетической функции печени (снижение уровня).
  4. Воспалительные и инфекционные заболевания:Мониторинг активности воспалительного процесса (повышение уровня).
  5. Травмы, ожоги, послеоперационный период:Оценка реакции острой фазы и рисков (как кровотечения из-за потребления, так и тромбоза из-за высокого уровня).
  6. Акушерская патология:Оценка рисков при преэклампсии, HELLP-синдроме, отслойке плаценты (часто снижение при ДВС).
  7. Онкологические заболевания:Гиперфибриногенемия может быть маркером опухолевой нагрузки и воспаления.
  8. Врожденные дефекты:Диагностика дисфибриногенемий (требует функциональных тестов, типа ТВ).

Цель исследования
Основные цели определения концентрации фибриногена в плазме:

  1. Диагностика причин кровотечений:Выявление дефицита фибриногена (врожденного или приобретенного – при ДВС, тяжелом поражении печени) как возможной причины геморрагического синдрома.
  2. Оценка риска тромбозов:Определение повышенного уровня фибриногена как независимого фактора риска сердечно-сосудистых событий (особенно в комбинации с другими факторами риска).
  3. Диагностика и мониторинг ДВС-синдрома:Контроль динамики уровня фибриногена наряду с тромбоцитами, ПДФ/Д-димером, ТВ, АЧТВ для оценки фазы синдрома и эффективности лечения.
  4. Оценка воспалительной реакции:Использование в качестве маркера острой фазы воспаления (вместе с СОЭ, С-реактивным белком) при инфекциях, аутоиммунных заболеваниях, после операций и травм.
  5. Оценка функции печени:Как индикатор синтетической способности печени при хронических заболеваниях (цирроз, гепатиты).
  6. Контроль заместительной терапии:При лечении врожденного дефицита фибриногена препаратами фибриногена или криопреципитатом.
  7. Предоперационное обследование:Оценка риска кровотечения перед хирургическими вмешательствами.

Что значат полученные результаты

  • Норма:Референсные значения обычно 0 – 4.0 г/л (200 – 400 мг/дл). Конкретный диапазон всегда смотрите в бланке лаборатории. Нормальный уровень указывает на достаточную концентрацию этого ключевого фактора свертывания.
  • Повышенный уровень (Гиперфибриногенемия):
    • Острая фаза воспаления:Инфекции (бактериальные, вирусные), системные воспалительные заболевания (ревматоидный артрит, васкулиты), травмы, ожоги, послеоперационный период.
    • Злокачественные новообразования.
    • Беременность(особенно III триместр – физиологическое повышение).
    • Курение.
    • Заболевания почек(нефротический синдром).
    • Сердечно-сосудистые заболевания(атеросклероз, острый коронарный синдром) – и как причина, и как следствие.
    • Прием эстрогенов(оральные контрацептивы, заместительная терапия), кортикостероидов.
  • Пониженный уровень (Гипофибриногенемия):
    • Врожденный дефицит:Редкие наследственные афибриногенемии (полное отсутствие) или гипофибриногенемии.
    • Приобретенный дефицит:
      • ДВС-синдром(массивное потребление).
      • Тяжелые заболевания печени(цирроз, фульминантный гепатит – нарушение синтеза).
      • Терапия тромболитиками(стрептокиназа, алтеплаза – лизис фибрина).
      • Массивное кровотечение/гемотрансфузии(разведение и потеря).
      • Дефицит витаминов С, В12, фолиевой кислоты(реже).
      • Прием некоторых лекарств:L-аспарагиназа (подавляет синтез), вальпроевая кислота, анаболические стероиды (редко).
      • Поздние стадии онкологических заболеваний.
    • Дисфибриногенемия:Качественный дефект. Уровень иммунологический (по Клаусу) может быть в норме, но функциональная активность снижена (выявляется по удлинению ТВ).

Факторы, влияющие на результат

  1. Преаналитический этап:
    • Неправильное наполнение пробирки(недонаполнение или переполнение).
    • Некачественное смешивание с цитратом.
    • Гемолиз, липемия (хилез)– могут влиять на точность измерений, особенно оптических методов.
    • Задержка центрифугирования/анализа– активация свертывания in vitro может снижать уровень.
    • Повторное замораживание/оттаивание плазмы.
  2. Аналитический этап:
    • Метод определения:Наиболее распространены:
      • Функциональный (по Клаусу):Измеряет скорость образования сгустка в разведенной плазме при добавлении избытка тромбина. Оценивает функциональную активность фибриногена. Золотой стандарт для оценки гемостатического потенциала.
      • Иммунологический:Определяет общую массу белка (например, иммунотурбидиметрия). Может давать нормальный результат при дисфибриногенемии.
      • Химический (по Рутберг):Осаждение белков. Менее специфичен, склонен к завышению результатов.
    • Калибровка анализатора.
  3. Факторы пациента:
    • Воспаление/инфекция/травма/стресс– повышают уровень.
    • Беременность– повышает уровень (особенно III триместр).
    • Лекарства:Эстрогены, кортикостероиды – повышают; тромболитики, L-аспарагиназа – снижают.
    • Курение– повышает уровень.
    • Генетические факторы– влияют на базовый уровень.

Определение фибриногена – краеугольный камень оценки как свертывающей системы (риск кровотечения или тромбоза), так и острофазового ответа организма. Выбор метода (функциональный или иммунологический) зависит от клинического вопроса. Интерпретация требует комплексного подхода с учетом всех клинических данных и результатов других исследований.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Долгов В.В., Свирин П.В. Лабораторная диагностика нарушений гемостаза.— Тверь: Триада, 2005. — Главы «Фибриноген», «Методы исследования фибриногена».
  2. Шифман Е.М. Гемостаз. Физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний.— Петрозаводск: ИнтелТек, 2001. — Раздел «Фибриноген и его роль».
  3. Mackie, I. J., Kitchen, S., Machin, S. J., & Lowe, G. D. (2003). «Guidelines on fibrinogen assays.» British Journal of Haematology, 121(3), 396-404. (Основные международные рекомендации по методам определения).
  4. Muszbek, L., Katona, É., & Kerényi, A. (2020). «Fibrinogen in health and disease.» Thrombosis and Haemostasis, 120(02), 213-226. (Подробный обзор биологии и клинического значения фибриногена).
  5. Kamath, S., & Lip, G. Y. H. (2003). «Fibrinogen: biochemistry, epidemiology and determinants.» QJM: An International Journal of Medicine, 96(10), 711-729. (Классический обзор, охватывающий эпидемиологию и роль как фактора риска).

 

Антиядерные антитела (антинуклеарные) Ig(A+M+G)

Краткая История:
История антиядерных антител (АНА) неразрывно связана с изучением системной красной волчанки (СКВ). Первое описание феномена, который позже стал основой для выявления АНА, принадлежит американскому гематологу Малкольму Харгривзу. В 1948 году он описал в костном мозге пациентов с СКВ особые клетки, названные «LЕ-клетками» (Lupus Erythematosus cells). Эти клетки представляли собой нейтрофилы, фагоцитировавшие ядерный материал других клеток, что происходило под действием аутоантител в сыворотке больного. Позже, в 1957 году, был разработан метод непрямой иммунофлюоресценции (нРИФ) на срезах тканей (изначально на печени крысы, затем на перевиваемой культуре клеток человека НЕр-2), который стал «золотым стандартом» скрининга АНА. Открытие АНА стало революционным, позволив не только диагностировать СКВ, но и открыв путь к пониманию аутоиммунных механизмов многих других ревматических болезней. Сегодня АНА – один из самых востребованных тестов в ревматологии.

Материал, используемый для исследования:
Для определения антиядерных антител (АНА) класса IgG используется сыворотка венозной крови пациента. Кровь берется из вены в вакутейнер без антикоагулянта или с активатором свертывания для получения сыворотки.

Как подготовиться к анализу:
Подготовка к анализу на АНА стандартна для большинства серологических тестов:

  1. Время сдачи:Рекомендуется сдавать кровь утром, натощак (после 8-12 часов голодания). Допускается легкий ужин накануне. Пить чистую воду разрешается.
  2. Лекарства:Сообщите врачу обо всех принимаемых препаратах. Некоторые лекарства могут индуцировать выработку АНА и даже вызывать лекарственную волчанку (например, Гидралазин, Прокаинамид, Изониазид, Хинидин, некоторые ингибиторы ФНО-α, Карбамазепин, Фенитоин). Вопрос об их временной отмене решает лечащий врач. Не отменяйте препараты самостоятельно!
  3. Инфекции:Острые инфекции (вирусные, бактериальные) могут вызывать транзиторное повышение титра АНА. По возможности, анализ следует сдавать вне острого инфекционного периода.
  4. Курение и алкоголь:Исключить за 24 часа до исследования.
  5. Физическая и эмоциональная нагрузка:Избегать интенсивных физических нагрузок и стрессов накануне и в день сдачи. Перед забором крови отдохните 10-15 минут.
  6. Инструментальные исследования:Рентген, КТ, МРТ, физиопроцедуры нежелательны накануне теста.

Описание данного вещества:
Антиядерные антитела (АНА) – это большая и разнообразная группа аутоантител класса IgG (реже IgM, IgA), направленных против компонентов собственного клеточного ядра (нуклеарных антигенов). Мишенями АНА могут быть:

  • ДНК:Двухцепочечная (нативная, dsDNA) и одноцепочечная (ssDNA).
  • Гистоны:Белки, упаковывающие ДНК в хромосомы.
  • Нуклеопротеины:Комплексы ДНК/РНК с белками (Sm, U1-RNP).
  • Ядерные ферменты и белки:Топоизомераза I (Scl-70), аминоацил-тРНК синтетазы (Jo-1, PL-7, PL-12 и др.), PCNA, Ku.
  • Белки ядрышка:РНК-полимераза I, PM-Scl, NOR-90, фибрилларин.
  • Белки центромеры:CENP-A, B, C.
  • Цитоплазматические антигены:Митохондриальные (AMA), рибосомальные (анти-P), сигнально-распознающие частицы (SRP).

Обнаружение АНА указывает на наличие аутоиммунного процесса, при котором иммунная система ошибочно атакует компоненты собственных клеток. Наиболее характерны АНА для системных аутоиммунных ревматических заболеваний (САРЗ).

Диагностика заболеваний:
Тест на АНА IgG является основным скрининговым тестом для выявления системных аутоиммунных ревматических заболеваний (САРЗ), таких как:

  1. Системная красная волчанка (СКВ):АНА выявляются у 95-99% пациентов. Особенно специфичны для СКВ антитела к dsDNA и анти-Sm.
  2. Системная склеродермия (ССД):АНА положительны у 90-95% пациентов. Характерны специфические АНА: анти-Scl-70 (диффузная форма), антицентромерные антитела (лимитированная форма, CREST-синдром), анти-RNA-полимераза III.
  3. Синдром Шегрена:АНА положительны у 70-80% пациентов. Часто выявляются анти-SSA/Ro и анти-SSB/La.
  4. Идиопатические воспалительные миопатии (дерматомиозит, полимиозит):АНА положительны у 60-80% пациентов. Специфичны антитела к аминоацил-тРНК синтетазам (анти-Jo-1 и др.), анти-Mi-2, анти-SRP, анти-TIF1γ.
  5. Смешанное заболевание соединительной ткани (СЗСТ):Характерно наличие антител к U1-RNP в высоких титрах.
  6. Ревматоидный артрит (РА):АНА могут выявляться у 30-50% пациентов (обычно в низких титрах), но не являются основными диагностическими маркерами (важнее РФ и АЦЦП).
  7. Аутоиммунные заболевания печени:Первичный билиарный холангит (ПБХ, АМА), аутоиммунный гепатит (АИГ).

Цель исследования:
Основные цели назначения анализа на АНА IgG:

  1. Скрининг на системные аутоиммунные ревматические заболевания (САРЗ):При наличии клинических симптомов, позволяющих заподозрить СКВ, ССД, синдром Шегрена, миозит (необъяснимая сыпь на лице, фотосенсибилизация, артриты, синдром Рейно, мышечная слабость, сухость глаз/рта, лихорадка неясного генеза, плеврит/перикардит, поражение почек, лейкопения/тромбоцитопения).
  2. Дифференциальная диагностика:Разграничение САРЗ от других состояний, имитирующих их симптомы (инфекции, онкология, другие ревматические болезни).
  3. Оценка риска развития САРЗ:У пациентов с неспецифическими симптомами (например, изолированный синдром Рейно, артралгии) или у родственников больных САРЗ (отягощенный семейный анамнез).
  4. Прогнозирование течения заболевания:Определение спектра АНА (с помощью референс-тестов: нРИФ на клетках НЕр-2, иммуноблот, ИФА к специфическим антигенам) помогает уточнить диагноз конкретного САРЗ и иногда предсказать особенности его течения и риск развития специфических осложнений (например, анти-dsDNA и люпус-нефрит при СКВ; анти-Scl-70 и интерстициальная болезнь легких при ССД).

Что значат полученные результаты:

  • Отрицательный результат (АНА не обнаружены):Значительно снижает вероятность наличия СКВ или других САРЗ, но не исключает их полностью. Некоторые формы САРЗ (например, СКВ с преимущественно почечным или неврологическим поражением) могут быть серонегативными по АНА в редких случаях. Также АНА могут отсутствовать на ранней стадии болезни. Отрицательный результат при наличии клиники требует повторного тестирования или углубленного обследования.
  • Положительный результат (АНА обнаружены):Требует обязательной интерпретации врачом-ревматологом в контексте клинической картины.
    • Титр:Указывает на концентрацию антител. Результат выдается в виде титра (например, 1:160, 1:320, 1:640 и т.д.) и описания типа свечения (если метод – нРИФ). Более высокие титры (обычно ≥1:320) чаще ассоциированы с САРЗ, чем низкие титры (1:80, 1:160). Однако низкие титры не исключают диагноз, а высокие – не всегда его подтверждают.
    • Тип свечения (при нРИФ):Может дать предварительную информацию о возможной мишени антител и, следовательно, о вероятном заболевании:
      • Гомогенное (диффузное):Анти-ДНК, анти-гистоны (СКВ, лекарственная волчанка).
      • Периферическое (краевое):Анти-dsDNA (специфично для СКВ).
      • Крапчатое (пятнистое, speckled):Наиболее часто. Анти-Sm, U1-RNP, SSA/Ro, SSB/La, Scl-70, Jo-1 и др. (Разные САРЗ).
      • Нуклеолярное:Анти-PM-Scl, РНК-полимераза I, фибрилларин, Th/To (ССД).
      • Центромерное:Антицентромерные антитела (лимитированная ССД, CREST).
      • Цитоплазматическое:Анти-синтетазы (Jo-1), анти-SRP, анти-митохондриальные (ПБХ), анти-рибосомальные (СКВ).
    • Специфичность:Положительный скрининговый тест на АНА всегда требует проведения референс-тестов для определения специфичности антител (ИФА к dsDNA, иммуноблот на экстрагируемые ядерные антигены — ENA screen). Обнаружение специфических АНА (анти-dsDNA, анти-Sm, анти-Scl-70, антицентромерные, анти-Jo-1, анти-SSA/Ro и др.) имеет гораздо большее диагностическое значение, чем просто положительный АНА скрининг, и помогает точно верифицировать диагноз конкретного САРЗ.
    • Ложноположительные результаты:Могут встречаться у пожилых людей (до 10-15%), при хронических инфекциях (туберкулез, гепатиты, инфекционный эндокардит), онкологических заболеваниях, других аутоиммунных заболеваниях (аутоиммунный тиреоидит), у здоровых родственников больных САРЗ, иногда при приеме лекарств.

Факторы, влияющие на результат:

  1. Метод исследования:«Золотым стандартом» скрининга является непрямая иммунофлюоресценция (нРИФ) на клеточной линии НЕр-2. Этот метод не только выявляет факт наличия АНА, но и дает информацию о типе свечения. ИФА-скрининг (без определения специфичности) может быть менее чувствительным к некоторым типам АНА (особенно антицентромерным, анти-DFS70) и не дает информации о типе свечения.
  2. Качество тест-системы:Использование аттестованных и валидированных тест-систем критично.
  3. Интерпретация свечения:Требует высокой квалификации лаборанта/врача КЛД.
  4. Титр:Результат выдается в титрах. Диагностически значимым обычно считается титр ≥1:160 (зависит от референсных значений лаборатории). Титры ниже (1:40, 1:80) часто встречаются у здоровых лиц, особенно пожилых.
  5. Возраст:Частота ложноположительных низких титров АНА увеличивается с возрастом (до 10-37% у людей старше 65 лет).
  6. Инфекции:Могут вызывать транзиторное повышение титра.
  7. Лекарства:Могут индуцировать АНА и клинику лекарственной волчанки.
  8. Определение специфичности:Положительный скрининг АНА обязательно должен сопровождаться тестированием на специфические антитела (анти-dsDNA, ENA-иммуноблот) для клинической интерпретации.

Анализ на антиядерные антитела (АНА) – незаменимый инструмент в диагностике системных ревматических заболеваний. Положительный результат – это сигнал к углубленному обследованию у ревматолога, а не диагноз. Отрицательный результат при наличии стойких подозрительных симптомов также не должен успокаивать и требует повторения теста или поиска других причин. Сочетание клинической картины, титра АНА, типа свечения и спектра специфических антител позволяет врачу поставить точный диагноз и назначить правильное лечение.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы (Антиядерные антитела):

  1. Agmon-Levin N., Damoiseaux J., Kallenberg C. et al. International recommendations for the assessment of autoantibodies to cellular antigens referred to as anti-nuclear antibodies. Ann Rheum Dis.2014;73(1):17-23. (Международные рекомендации по тестированию АНА).
  2. Насонов Е.Л., Александрова Е.Н. Современные стандарты лабораторной диагностики ревматических заболеваний. Клиническая лабораторная диагностика. Москва; 2015. (Русскоязычное руководство по лабораторной диагностике).
  3. Meroni P.L., Schur P.H. ANA screening: an old test with new recommendations. Ann Rheum Dis.2010;69(8):1420-1422. (Обзор значения АНА скрининга).
  4. Aringer M., Costenbader K., Daikh D. et al. 2019 European League Against Rheumatism/American College of Rheumatology Classification Criteria for Systemic Lupus Erythematosus. Arthritis Rheumatol.2019;71(9):1400-1412. (Классификационные критерии СКВ, где АНА — обязательный критерий).
  5. Иванова М.М. Антиядерные антитела в клинической практике: интерпретация результатов. Современная ревматология. 2018;12(3):105-110. (Русскоязычный обзор по интерпретации).
Мы используем cookies для быстрой и удобной работы сайта. Продолжая пользоваться сайтом, вы принимаете условия обработки персональных данных