Архив Анализ - Страница 4 из 30 - LDL
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00
  • Приём анализов осуществляется с ПН по ПТ с 7:30 до 14:30, СБ с 7:30 до 11:00

ул. Новопромышленная, 10

График работы:
пн-пт - с 7:30 до 14:30,
сб - с 7:30 до 12:00, вс - выходной

E-mail:

ldl@ldl.su

755 Короткий номер

355 Короткий номер

+7 (959) 130 05 00

+7 (959) 599 87 55

Горячая линия

Получить результаты
Generic selectors
Exact matches only
Search in title
Search in content
Post Type Selectors
alt 0

Клинический анализ крови (5-diff анализатор), аппаратный подсчёт + обязательная микроскопия мазка крови

Краткая История:
История ОАК описана в предыдущей статье. Микроскопия мазка крови – старейший метод исследования, зародившийся одновременно с изобретением микроскопа. Несмотря на революцию, которую произвели автоматические гематологические анализаторы (5-diff), ручная микроскопия мазка остается незаменимым инструментом. Она позволяет визуально оценить морфологию клеток крови, выявить те аномалии и патологические формы, которые не могут достоверно определить даже самые совершенные анализаторы. Сочетание автоматического подсчета с обязательной микроскопией мазка представляет собой «золотой стандарт» в современной гематологической диагностике, обеспечивая максимальную информативность и точность.

Материал, используемый для исследования:

  • Венозная кровь:Предпочтительный материал. Забирается в вакуумные пробирки с ЭДТА (K2 или K3).
  • Капиллярная кровь:Может использоваться, но менее предпочтительна (см. риски в предыдущей статье). Для микроскопии мазок готовится непосредственно после забора капиллярной крови.

Как подготовиться к анализу:
Подготовка идентична подготовке к ОАК без обязательной микроскопии (см. Статью 1):

  1. Утром, натощак (8-12 часов).
  2. Исключить алкоголь, жирную пищу накануне.
  3. Избегать физических и эмоциональных нагрузок за 24-48 часов.
  4. Сообщить врачу о принимаемых лекарствах.
  5. Не курить за 1-2 часа до анализа.
  6. Сдавать кровь до других процедур.
  7. Отдохнуть 10-15 минут перед забором.

Описание данного исследования:
Этот анализ включает в себя ВСЕ параметры, предоставляемые автоматическим 5-diff анализатором (количество эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, гемоглобин, гематокрит, эритроцитарные и тромбоцитарные индексы, лейкоцитарная формула 5 популяций), измерение СОЭ по методу Вестергрена, и обязательное дополнительное исследование – микроскопию окрашенного мазка периферической крови. Микроскопия проводится врачом-лаборантом (клиническим лабораторным специалистом) или врачом-гематологом с использованием светового микроскопа. Оцениваются:

  • Морфология эритроцитов (размер, форма, окраска, включения).
  • Дифференцировка лейкоцитов (подтверждение автоматической формулы, поиск незрелых, атипичных форм, бластов).
  • Морфология тромбоцитов (размер, форма, степень агрегации).
  • Присутствие патологических клеток (например, клетки красной волчанки, бластные клетки при лейкозах).
  • Наличие внутриклеточных паразитов (малярийные плазмодии, бабезии).

Цель исследования:
Цели совпадают с целями стандартного ОАК (скрининг, диагностика, мониторинг), но добавлена КЛЮЧЕВАЯ дополнительная цель:

  1. Верификация и дополнение данных анализатора:Подтверждение или уточнение результатов автоматического подсчета, особенно при наличии «флагов» (предупреждений) от прибора (например, «Атипичные лимфоциты?», «Бласты?», «Анизоцитоз эритроцитов?», «Тромбоцитарные сгустки?»).
  2. Оценка морфологии клеток:Визуальное выявление аномалий, которые анализатор может не обнаружить или интерпретировать неправильно:
    • Патологические формы эритроцитов (сфероциты, овалоциты, серповидные, шизоциты, мишеневидные, акантоциты и др.).
    • Включения в эритроцитах (тельца Жолли, кольца Кебота, базофильная пунктация).
    • Аномалии лейкоцитов (токсическая зернистость, вакуолизация цитоплазмы, тельца Деле, атипичные мононуклеары при инфекционном мононуклеозе, бластные клетки).
    • Оценка размера и агрегации тромбоцитов.
  3. Диагностика специфических заболеваний:Выявление характерных морфологических признаков (например, серповидные клетки при серповидноклеточной анемии, бласты при остром лейкозе, микроагрегаты тромбоцитов при гепарин-индуцированной тромбоцитопении).
  4. Выявление гемопаразитов:Диагностика малярии, бабезиоза и других паразитарных инвазий крови.

Диагностика заболеваний:
Обязательная микроскопия значительно расширяет диагностические возможности ОАК:

  • Уточнение типа анемии:Морфология эритроцитов (микроцитоз, макроцитоз, гипохромия, сфероцитоз, овалоцитоз, серповидность) является ключевой для дифференциальной диагностики (железодефицитная, талассемия, наследственный сфероцитоз/овалоцитоз, серповидноклеточная анемия, гемолитические анемии).
  • Диагностика миелодиспластических синдромов (МДС):Выявление диспоэза (аномального кроветворения) – диморфизм эритроцитов, гипогранулярные нейтрофилы, пельгероидная аномалия, гиперсегментированные нейтрофилы, тромбоциты гигантских размеров или с дисгрануляцией.
  • Диагностика острых и хронических лейкозов:Визуальная идентификация бластных клеток и их морфологических особенностей, оценка степени дифференцировки. Выявление атипичных лимфоцитов при лимфопролиферативных заболеваниях.
  • Диагностика гемолитических анемий:Обнаружение шизоцитов (фрагментированных эритроцитов) при микроангиопатической гемолитической анемии (ТТП, ГУС, ДВС), сфероцитов.
  • Диагностика паразитарных инфекций:Обнаружение малярийных плазмодиев (разные стадии) или бабезий в эритроцитах.
  • Оценка тромбоцитопении:Исключение псевдотромбоцитопении (агрегация тромбоцитов в пробирке ЭДТА), выявление гигантских тромбоцитов при некоторых наследственных тромбоцитопатиях.

Что значат полученные результаты:
Интерпретация включает все параметры автоматического анализа (как в Статье 1) и детальное описание морфологических находок в мазке:

  • Эритроциты:Описывается степень анизоцитоза (вариабельности размеров), пойкилоцитоза (вариабельности форм), наличие и тип патологических форм, изменения окраски (гипохромия, гиперхромия, полихроматофилия), наличие включений. Каждая аномалия имеет диагностическое значение (например, сфероциты – наследственный сфероцитоз, аутоиммунная гемолитическая анемия; шизоциты – микроангиопатическая гемолиз; мишеневидные клетки – талассемия, заболевания печени).
  • Лейкоциты:Поми подтверждения автоматической формулы, описываются аномалии ядра и цитоплазмы (токсическая зернистость, вакуолизация, тельца Деле – указывают на тяжелую инфекцию или интоксикацию), наличие атипичных лимфоцитов (вирусные инфекции), бластных клеток (лейкозы), незрелых гранулоцитов («сдвиг влево» – острые инфекции, воспаление).
  • Тромбоциты:Оценивается размер (гигантские тромбоциты – при некоторых наследственных состояниях или МДС), форма, степень агрегации в мазке. Выявляются макротромбоциты.
  • Прочее:Наличие гемопаразитов (указывается вид и стадия), других патологических клеток.

Факторы, влияющие на результат:
Помимо факторов, перечисленных для стандартного ОАК (Статья 1), на качество микроскопии мазка влияют:

  1. Качество приготовления мазка:Толстый, тонкий, неровный мазок затрудняет оценку морфологии.
  2. Качество окраски мазка:Неправильная фиксация или окраска (например, по Романовскому-Гимзе) искажает цвет и структуру клеток.
  3. Время между забором крови и приготовлением мазка:Длительное хранение крови до приготовления мазка (особенно > 3-4 часов) может вызвать морфологические изменения клеток (набухание лейкоцитов, сморщивание эритроцитов).
  4. Опыт и квалификация специалиста:Микроскопия мазка – субъективный метод, требующий высокой квалификации и опыта врача-лаборанта/гематолога для точной идентификации клеток и аномалий.
  5. Артефакты мазка:Наличие кристаллов антикоагулянта, фибриновых нитей, загрязнений стекла могут имитировать патологию.
  6. Правильность сканирования мазка:Необходимо исследовать адекватную площадь мазка (обычно «монолаер» в тонкой части) для выявления редких патологических клеток.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Литература:

  1. Камышников В.С. Атлас клеток крови и костного мозга. — М.: МЕДпресс-информ, 2016. — 200 с.
  2. Bain B.J. Blood Cells: A Practical Guide. 5th Edition. Wiley-Blackwell, 2015.
  3. Глотов А.С., Павлов А.Д. Морфологическая диагностика заболеваний системы крови. Атлас. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018. — 352 с.
  4. Клинические рекомендации. Гематология / Под ред. В.Г. Савченко. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2020. — 896 с. (Разделы по диагностике анемий, лейкозов, МДС).
  5. Международный совет по стандартизации в гематологии (ICSH). Рекомендации по ручной дифференцировке лейкоцитов. Int J Lab Hematol. 2015;37(3):287-303.

Микроскопия грибковой флоры

Краткая История:
Микроскопия как метод выявления грибов в патологическом материале имеет давнюю историю, уходящую корнями в XIX век, когда были описаны многие возбудители микозов. Несмотря на развитие культуральных (посев) и молекулярно-генетических (ПЦР) методов, микроскопическое исследование остается первым, быстрым и часто решающим этапом в диагностике грибковых инфекций (микозов). Прямое обнаружение элементов гриба (гиф, дрожжевых клеток, спор) в тканях или отделяемом позволяет быстро подтвердить грибковую этиологию процесса и начать лечение, не дожидаясь результатов посева, который может занимать недели. Метод особенно важен при поверхностных микозах кожи, ногтей, слизистых, а также при исследовании мокроты, гноя, биоптатов.

Материал, используемый для исследования:
Материал зависит от локализации предполагаемой грибковой инфекции:

  • Кожа, ногти:Чешуйки кожи, соскоб с очага поражения, обрезки ногтевых пластин, волосы (с корнем).
  • Слизистые оболочки:Соскоб или мазок-отпечаток со слизистой полости рта, языка, влагалища, уретры, конъюнктивы.
  • Мокрота, бронхоальвеолярный лаваж (БАЛЖ):При подозрении на грибковую пневмонию (например, аспергиллез, кандидоз).
  • Гной, отделяемое ран, свищей.
  • Ликвор (спинномозговая жидкость):При подозрении на грибковый менингит (криптококкоз).
  • Моча:При подозрении на грибковую инфекцию мочевыводящих путей.
  • Биопсийный материал (ткани):При глубоких микозах или подозрении на них.

Как подготовиться к анализу:
Подготовка определяется типом материала:

  • Кожа/Ногти:
    • Прекратить использование местных противогрибковых кремов/мазей/лаков за 7-14 дней до забора (по согласованию с врачом!).
    • Не обрабатывать очаг поражения йодом, зеленкой, спиртом в течение нескольких дней.
    • Не мыть область поражения с мылом непосредственно перед забором (можно вечером накануне).
  • Слизистые (рот, влагалище, уретра):
    • Рот:См. подготовку к мазку из ротовой полости (не чистить зубы/не полоскать утром, не есть/не пить за 2 часа).
    • Влагалище/Уретра:Забор обычно проводится гинекологом/урологом.
      • Не применять местные препараты (свечи, кремы, спринцевания) за 3-7 дней.
      • Исключить половые контакты за 24-48 часов.
      • Не мочиться за 1.5-2 часа до забора материала из уретры.
      • Забор предпочтительно проводить не ранее 5 дня менструального цикла (не во время менструации).
    • Мокрота:Собирать утром, натощак, после тщательного полоскания рта водой (не антисептиком!), при глубоком откашливании.
    • Общие рекомендации:
      • Сообщить врачу о принимаемых системных противогрибковых препаратах или антибиотиках.
      • Следовать указаниям врача относительно места и времени забора.

Описание данного исследования:
Микроскопия грибковой флоры – это исследование патологического материала под микроскопом с целью прямого обнаружения элементов грибов. Для повышения информативности используются различные методы обработки материала:

  1. Нативный препарат (необработанный):Материал помещают в каплю физиологического раствора или 10-20% раствора KOH (гидроксид калия). KOH растворяет кератин (чешуйки кожи, ногти, слизь), делая грибные структуры более видимыми. Позволяет увидеть гифы, дрожжевые клетки, споры.
  2. Окрашенный препарат:
    • Окраска по Граму:Дрожжевые клетки Candida окрашиваются в синий/фиолетовый цвет (Грам+), гифы могут окрашиваться слабо.
    • Окраска метиленовым синим, лактофуксином:Для общей визуализации.
    • Калькофлуор белый:Специальный флуоресцентный краситель, связывающийся с хитином и целлюлозой клеточной стенки грибов. При просмотре под флуоресцентным микроскопом грибы светятся ярко-зеленым. Очень чувствительный метод.
    • Тушь (при исследовании ликвора на криптококк):Капля ликвора смешивается с тушью – капсула криптококка видна как светлый ореол вокруг дрожжевой клетки на черном фоне (тест негативного окрашивания).

Врач-лаборант или миколог исследует препарат под микроскопом (обычно сначала при малом, затем при большом увеличении, иммерсии) на наличие:

  • Гиф (нитевидные структуры) – септированные (с перегородками) или несептированные.
  • Псевдогифы (цепочки вытянутых дрожжевых клеток).
  • Дрожжевые клетки (почкующиеся или нет).
  • Артроспоры (бластоспоры, расположенные цепочками).
  • Споры (макроконидии, микроконидии).
  • Характерные структуры (например, друзы актиномицетов).

Цель исследования:
Основные цели микроскопии на грибы:

  1. Быстрое подтверждение грибковой этиологии заболевания:Обнаружение элементов гриба в патологическом материале является прямым доказательством инфекции.
  2. Дифференциальная диагностика:Отличить грибковое поражение от бактериального, вирусного, аллергического или неинфекционного дерматоза.
  3. Ориентировочная идентификация типа гриба:Морфология элементов может указать на группу возбудителя:
    • Дрожжевые клетки и псевдогифы – Candida spp.
    • Разветвленные септированные гифы – Aspergillus spp., Fusarium spp. и др. гиалиновые гифомицеты.
    • Широкие, слабо септированные или несептированные гифы – Mucorales (зигомицеты).
    • Дрожжевые клетки с широкой капсулой в ликворе – Cryptococcus neoformans.
    • Короткие гифы, распадающиеся на артроспоры – Geotrichum spp., Trichosporon spp.
    • Кожные грибы (дерматофиты) в коже/ногтях/волосах: видимые гифы или артроспоры.
  4. Контроль эффективности лечения:Снижение количества или исчезновение грибковых элементов в динамике.
  5. Отбор материала для культурального исследования:Микроскопия помогает выбрать наиболее информативный материал для посева.

Диагностика заболеваний:
Микроскопия – ключевой метод диагностики при:

  • Дерматофитиях (дерматомикозах):Микроспория, трихофития, эпидермофития, руброфития, онихомикоз (грибок ногтей). Обнаружение гиф или артроспор в чешуйках кожи, ногтях, волосах.
  • Кандидозе:Кожный, слизистых (оральный, вагинальный), висцеральный. Обнаружение дрожжевых клеток, псевдогифов, гифов.
  • Разноцветном (отрубевидном) лишае:Обнаружение характерных скоплений округлых дрожжевых клеток и коротких изогнутых гиф («спагетти с фрикадельками») в кожных чешуйках.
  • Кератомикозах (Piedraia hortae, Trichosporon spp.):Обнаружение элементов гриба в узелках на волосах.
  • Аспергиллезе:Обнаружение септированных гиф характерного вида (дихотомическое ветвление под острым углом) в мокроте, БАЛЖ, биоптатах, отделяемом из пазух.
  • Мукормикозе (зигомикозе):Обнаружение широких несептированных (или слабо септированных) гиф с неправильным ветвлением в биоптатах или отделяемом.
  • Криптококкозе:Обнаружение дрожжевых клеток с характерной капсулой в ликворе (тушь-препарат), мокроте, биоптатах.
  • Пневмоцистозе (Pneumocystis jirovecii):Обнаружение цист и трофозоитов в мокроте или БАЛЖ (окраска по Романовскому-Гимзе, Грокотту, калькофлуором белым).

Что значат полученные результаты:
Результат формулируется как:

  • «Обнаружены элементы гриба»:Это положительный результат, подтверждающий наличие грибковой инфекции. Описывается вид найденных структур:
    • Дрожжевые клетки (бластоспоры):Указывает на дрожжевую инфекцию (чаще всего Candida spp., реже Cryptococcus, Trichosporon и др.).
    • Псевдогифы:Характерны для Candida albicans и некоторых других Candida spp., указывают на инвазивный рост.
    • Гифы (мицелий):
      • Септированные гифы:Могут принадлежать дерматофитам, Aspergillus spp., Fusarium spp., Scedosporium spp. и др.
      • Несептированные гифы:Характерны для грибов порядка Mucorales (Mucor, Rhizopus, Lichtheimia).
    • Артроспоры (артроконидии):Характерны для Geotrichum, Trichosporon, а также являются формой размножения дерматофитов в пораженном материале.
    • Споры (конидии):Могут быть обнаружены (особенно при поверхностных микозах), имеют диагностическое значение при наличии характерных форм.
    • Дрожжевые клетки с капсулой (в туши):Диагностический признак Cryptococcus neoformans/gattii.
  • «Элементы гриба не обнаружены»:Отрицательный результат. НЕ исключает полностью грибковую инфекцию (грибов может быть мало, материал взят неудачно, пациент применял противогрибковые средства). Требует оценки в комплексе с клиникой и другими исследованиями (посев, ПЦР).

Факторы, влияющие на результат:

  1. Качество забора материала:Забор с неповрежденного участка, недостаточное количество материала, поверхностный соскоб без чешуек – главные причины ложноотрицательных результатов.
  2. Предварительная местная терапия:Применение противогрибковых средств перед забором материала подавляет грибы.
  3. Метод обработки материала:
    • Неправильная концентрация или время воздействия KOH (слишком слабое – не очищает препарат, слишком сильное – разрушает грибы).
    • Некачественная окраска.
    • Неиспользование чувствительных методов (калькофлуор белый).
  4. Опыт исследователя:Требуется высокий уровень подготовки для распознавания грибковых элементов, особенно на фоне детрита, артефактов, бактерий.
  5. Стадия заболевания:В начальной стадии или при хроническом вялом течении грибов в материале может быть мало.
  6. Тип гриба:Некоторые грибы (например, гистоплазма) плохо видны при прямой микроскопии.
  7. Ложноположительные результаты:Редко, могут быть вызваны артефактами (волокна, кристаллы, загрязнения), напоминающими гифы.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Литература:

  1. Сергеев А.Ю., Сергеев Ю.В. Грибковые инфекции. Руководство для врачей. — М.: Бином, 2008. — 480 с.
  2. Климко Н.Н. Микозы: диагностика и лечение. Руководство для врачей. — М.: Медицинское информационное агентство, 2007. — 336 с.
  3. Richardson M.D., Warnock D.W. Fungal Infection: Diagnosis and Management. 4th Edition. Wiley-Blackwell, 2012.
  4. Лабораторная диагностика микозов: Клинические рекомендации / Под ред. Н.Н. Климко. — СПб.: Нордмедиздат, 2018. — 120 с.
  5. Procop G.W., Church D.L., Hall G.S., Janda W.M., Koneman E.W., Schreckenberger P.C., Woods G.L. Koneman’s Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 7th Edition. Lippincott Williams & Wilkins, 2016. (Разделы по микологии).

Назоцитограмма

Краткая История
Цитологическое исследование назального секрета (назоцитограмма) имеет долгую историю, уходящую корнями в начало XX века. Хотя метод микроскопии известен столетиями, систематическое изучение клеточного состава слизи носа для диагностики ринитов стало активно развиваться в 50-70-е годы прошлого века. Пионером в этой области считается бельгийский оториноларинголог Жак Ламбертс, который детально описал цитологические картины при различных типах ринитов. Изначально использовались простые методы окраски (гематоксилин-эозин), позже стали применять более специфические (по Романовскому-Гимзе, по Маю-Грюнвальду), позволяющие лучше дифференцировать типы клеток, особенно эозинофилы. Сегодня назоцитограмма – рутинный, но крайне информативный метод в диагностике и дифференциации ринитов, особенно аллергической природы.

Материал, Используемый для Исследования
Основной материал для назоцитограммы – назальный секрет (слизь), полученный путем мазка или соскоба со слизистой оболочки полости носа. Забор обычно производится стерильным ватным тампоном-зондом или специальной щеточкой из средней носовой раковины или других участков по назначению врача. Иногда используется аспирация слизи. Полученный материал наносится на предметное стекло, высушивается на воздухе и фиксируется перед окрашиванием.

Как Подготовиться к Анализу
Правильная подготовка критична для достоверности результата:

  1. Прекращение местных препаратов:За 24-48 часов до исследования необходимо прекратить использование назальных спреев (особенно кортикостероидных, сосудосуживающих, антигистаминных), мазей и капель в нос, если это не оговорено с лечащим врачом. Вода для промывания носа разрешена.
  2. Отмена системных препаратов:По согласованию с врачом может потребоваться временная отмена системных антигистаминных препаратов или кортикостероидов за несколько дней до анализа.
  3. Время после приема пищи:Исследование не проводится сразу после еды (особенно горячей и острой), рекомендуется выдержать интервал 1-2 часа.
  4. Очищение носа:Непосредственно перед забором материала НЕ следует высмаркиваться или промывать нос, чтобы не удалить исследуемые клетки и слизь.
  5. Сообщите врачу:Обязательно сообщите врачу о всех принимаемых лекарствах, недавних операциях на носу, острых инфекциях, беременности.

Описание Данного Вещества (Назальный Секрет и Его Клеточный Состав)
Назальный секрет – это сложная смесь, вырабатываемая бокаловидными клетками и серозно-слизистыми железами слизистой оболочки носа. Его основная функция – увлажнение вдыхаемого воздуха, улавливание и удаление частиц пыли, аллергенов и микроорганизмов. Здоровый назальный секрет содержит:

  • Вода:Основа секрета.
  • Муцин:Гликопротеины, придающие слизи вязкость и гелеобразные свойства.
  • Соли (электролиты).
  • Белки:Лизоцим, лактоферрин, секреторный IgA – обладают антимикробными свойствами.
  • Клетки:В норме в секрете присутствует небольшое количество слущенных эпителиальных клеток (плоских и реснитчатых), единичные нейтрофилы и лимфоциты.

При патологических состояниях состав секрета и, главное, его клеточный состав (цитограмма) резко меняется. Именно оценка соотношения и количества различных клеток под микроскопом после окраски и составляет суть назоцитограммы.

Диагностика Заболеваний
Назоцитограмма является ключевым методом для дифференциальной диагностики различных типов ринитов и синуситов:

  1. Аллергический ринит (АР):Характерно резкое повышение количества эозинофилов (более 10% от общего числа клеток, часто до 70-90%). Также могут присутствовать эпителиальные клетки с признаками метаплазии (т.н. «креолы»), базофилы/тучные клетки.
  2. Инфекционный ринит (вирусный, бактериальный):
    • Вирусный:Преобладание нейтрофилов, много слущенного реснитчатого эпителия, могут встречаться клетки с внутриклеточными включениями (при некоторых вирусах).
    • Бактериальный:Очень большое количество нейтрофилов (часто в состоянии дегенерации – распадающиеся), возможны фагоцитированные бактерии, слущенный эпителий.
  3. Вазомоторный ринит:Клеточная картина скудная, преобладают эпителиальные клетки, небольшое количество нейтрофилов, эозинофилы обычно отсутствуют или единичны.
  4. Эозинофильный ринит неаллергической природы (NARES):Высокий процент эозинофилов (как при АР), но при отсутствии подтвержденной аллергии.
  5. Атрофический ринит:Преобладание слущенного эпителия (часто ороговевающего), кокковая флора, мало лейкоцитов.
  6. Грибковый синусит:Могут обнаруживаться гифы или споры грибов, эозинофилы (особенно при аллергическом грибковом синусите), кристаллы Шарко-Лейдена.

Цель Исследования
Основные цели проведения назоцитограммы:

  1. Дифференциация типа ринита:Определить, является ли ринит аллергическим (эозинофильным), инфекционным (нейтрофильным), вазомоторным или имеет другую природу (например, NARES). Это принципиально важно для выбора тактики лечения.
  2. Подтверждение аллергической природы ринита:Обнаружение большого количества эозинофилов – важный диагностический критерий АР, особенно при сомнительных результатах аллерготестов или при локальной форме.
  3. Оценка эффективности лечения:Мониторинг цитологической картины на фоне терапии (особенно при АР – снижение количества эозинофилов указывает на эффективность противовоспалительной терапии).
  4. Диагностика вторичной инфекции:Выявление нейтрофильного воспаления на фоне аллергического или вазомоторного ринита.
  5. Выявление специфических изменений:Обнаружение клеток, характерных для редких заболеваний (например, при гранулематозах), грибковых элементов.
  6. Контроль состояния слизистой оболочки.

Что Значат Полученные Результаты (Интерпретация)
Интерпретацией назоцитограммы занимается врач (ЛОР, аллерголог-иммунолог), сопоставляя ее данные с клинической картиной и другими исследованиями. Основные параметры:

  1. Эозинофилы:
    • Повышены (>10%):Сильно указывает на аллергическую реакцию (АР, NARES) или паразитарную инвазию. Высокий процент коррелирует с тяжестью аллергического воспаления. Снижение на фоне лечения – хороший прогностический признак.
    • Норма (0-5%) или незначительно повышены (5-10%):Аллергический компонент маловероятен или слабо выражен.
  2. Нейтрофилы:
    • Повышены:Признак острого или хронического инфекционного воспаления (вирусного, бактериального). Большое количество дегенеративных форм характерно для бактериальной инфекции. Могут быть повышены и при неаллергическом воспалении с вторичной инфекцией.
    • Норма (единичные):Отсутствие активной инфекции.
  3. Лимфоциты:
    • Повышены:Могут указывать на хроническое воспаление, вирусную инфекцию (особенно в сочетании с нейтрофилами) или специфические процессы.
  4. Эпителиальные клетки:
    • Плоский эпителий:В большом количестве – признак слущивания, может быть при атрофии, раздражении, неправильном заборе (из преддверия носа).
    • Реснитчатый эпителий:Нормальные клетки слизистой. Их разрушение (цилиопатии) может быть при хроническом воспалении, инфекциях.
    • «Креолы» (эозинофилы на эпителии или бокаловидные клетки с эозинофильными гранулами):Характерны для аллергического ринита.
  5. Бокаловидные клетки:Их увеличение говорит о гиперплазии слизистых желез (часто при хронических ринитах, особенно аллергических).
  6. Бактериальная/грибковая флора:Обнаружение большого количества бактерий внутри нейтрофилов (фагоцитоз) – признак активной инфекции. Наличие грибковых элементов требует внимания.
  7. Кристаллы Шарко-Лейдена:Образуются из гранул распадающихся эозинофилов, маркер активного аллергического процесса.

Факторы, Влияющие на Результат
На достоверность назоцитограммы могут влиять:

  1. Неправильная подготовка пациента:Использование назальных препаратов перед анализом, интенсивное высмаркивание.
  2. Техника забора материала:
    • Слишком поверхностный забор (только слизь без клеток).
    • Забор из неправильной зоны (например, преддверия носа – много плоского эпителия).
    • Травматизация слизистой при заборе (примесь крови, много плоского эпителия).
    • Некачественное нанесение материала на стекло (слишком толстый или тонкий мазок).
  3. Ошибки при транспортировке и обработке:Нарушение условий хранения, фиксации, неправильная окраска.
  4. Стадия заболевания:В самом начале аллергического приступа эозинофилы могут еще не мигрировать в большом количестве в секрет. После интенсивного лечения их количество снижается.
  5. Сопутствующие состояния:Острые респираторные инфекции, недавние хирургические вмешательства в полости носа, курение.
  6. Опыт лаборанта/врача-цитолога:Правильная идентификация клеток требует высокой квалификации.

Заключение
Назоцитограмма – это неинвазивный, относительно простой, но высокоинформативный метод, незаменимый для врача в установлении точной природы воспаления слизистой оболочки носа. Она позволяет объективно подтвердить аллергический характер ринита, выявить инфекционный компонент и контролировать эффективность проводимой терапии, что напрямую влияет на выбор правильной тактики лечения и улучшение качества жизни пациента.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список Литературы (Назоцитограмма):

  1. Bousquet, J., Khaltaev, N., Cruz, A. A., Denburg, J., Fokkens, W. J., Togias, A., … & Zuberbier, T. (2008). Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) 2008 update (in collaboration with the World Health Organization, GA²LEN and AllerGen). Allergy, 63(S86), 8-160. (Содержит разделы о диагностике АР, включая цитологию).
  2. Meltzer, E. O., Hamilos, D. L., Hadley, J. A., Lanza, D. C., Marple, B. F., Nicklas, R. A., … & Druce, H. M. (2006). Rhinosinusitis: establishing definitions for clinical research and patient care. Journal of Allergy and Clinical Immunology, 118(5), S1-S61. (Описание различных ринитов/синуситов, роль диагностики).
  3. Pawankar, R., Mori, S., Ozu, C., & Kimura, S. (2011). Overview on the pathomechanisms of allergic rhinitis. Asia Pacific Allergy, 1(3), 157-167. (Подробно о роли эозинофилов и других клеток при АР).
  4. Settipane, R. A., & Kaliner, M. A. (2013). Chapter 5: Nonallergic rhinitis. American Journal of Rhinology & Allergy, 27(3_suppl), S48-S51. (Дифференциация аллергического и неаллергического ринита, роль назоцитограммы в диагностике NARES).
  5. Тарасова Г.Д. Современная риноцитограмма: методика, интерпретация, клиническое значение. // Вестник оториноларингологии. — 2018. — Т. 83, №2. — С. 82-86. (Актуальное российское руководство по методике и интерпретации).

Определение Helicobacter Pylori в биоматериале из ЖКТ

  1. Краткая История
    Открытие Helicobacter pylori(H. pylori) в 1982 году австралийскими учеными Барри Маршаллом и Робином Уорреном стало революцией в гастроэнтерологии. До этого считалось, что в агрессивной кислой среде желудка бактерии существовать не могут, а причиной гастрита и язвы являются стресс и неправильное питание. Маршалл и Уоррен не только выделили бактерию из биоптатов желудка больных гастритом, но и Маршалл, чтобы доказать ее патогенность, выпил культуру H. pylori, вызвав у себя острый гастрит. За это открытие они получили Нобелевскую премию по физиологии и медицине в 2005 году. Установление роли H. pylori в развитии хронического гастрита, язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, MALT-лимфомы и рака желудка кардинально изменило подходы к лечению этих заболеваний – с подавления кислотности на эрадикацию (уничтожение) бактерии. С тех пор разработано множество методов диагностики H. pylori.
  2. Материал, используемый для исследования
    Выбор материала зависит от метода исследования:
  3. Инвазивные (требующие ФГДС и биопсии):
    • Биоптаты слизистой оболочки:
      • Антрального отдела желудка (минимум 1).
      • Тела желудка (минимум 1).
      • (Иногда) из зоны язвы или подозрительного образования.
    • Желудочный сок/слизь (менее часто).
  4. Неинвазивные (не требующие ФГДС):
    • Кровь (сыворотка/плазма):Для серологических тестов (антитела).
    • Кал:Для выявления антигена H. pylori (ПЦР на H. pylori в кале также возможен, но менее распространен для первичной диагностики).
    • Выдыхаемый воздух:Для дыхательных тестов с меченой мочевиной (¹³С- или ¹⁴С-UBT).
  1. Как подготовиться к анализу (Подробно)
    Подготовка крайне важнаи зависит от конкретного метода:
  • Общие правила (для всех тестов, кроме серологии):
    • Антибиотики и препараты висмута:Отменить минимум за 4 недели до исследования. Они подавляют H. pylori, приводя к ложноотрицательным результатам.
    • Ингибиторы протонной помпы (ИПП): Омепразол, Пантопразол, Эзомепразол, Рабепразол, Лансопразол.Отменить минимум за 2 недели до исследования (кроме серологии). Они снижают кислотность и бактериальную нагрузку, что может исказить результаты быстрого уреазного теста, гистологии, дыхательного теста, ПЦР, теста на антиген в кале.
    • Н2-гистаминоблокаторы (Фамотидин, Ранитидин):Отменить минимум за 3-5 дней до исследования (кроме серологии).
    • Антациды (Альмагель, Фосфалюгель, Маалокс):Можно принимать, но отменить в день исследования (для дыхательного теста и ФГДС).
  • Перед ФГДС с биопсией:
    • Голод:Полное голодание в течение 8-12 часов (обычно с вечера). Утром не пить воду.
    • Курение:Не курить в день исследования до процедуры.
  • Дыхательный тест (UBT — Urea Breath Test):
    • Голод:Строгое голодание в течение 6-14 часов (уточнить в лаборатории). Утром можно выпить немного воды.
    • Гигиена полости рта:Утром почистить зубы.
    • Курение:Запрещено курить минимум за 6 часов до теста и до его окончания.
    • Физическая активность:Избегать физических нагрузок перед тестом.
    • Прием тестового раствора:Точно следовать инструкции лаборанта (задержать дыхание, выпить раствор, дышать в трубку в определенные моменты времени).
  • Анализ кала на антиген H. pylori:
    • Сбор материала:Собирать в чистый сухой контейнер из разных мест каловой массы. Избегать попадания мочи и воды. Лучше использовать специальные контейнеры с ложечкой.
    • Хранение:Доставить в лабораторию как можно скорее (в течение 2-4 часов). Если немедленная доставка невозможна, хранить в холодильнике (+2..+8°C) не более 24 часов (уточнить требования лаборатории). Возможна заморозка для некоторых тестов.
  • Серологический анализ крови (Антитела к H. pylori):
    • Голод:Рекомендуется сдавать натощак (8-12 часов), но не критично для большинства тестов.
    • Время суток:Предпочтительно утро.
    • Лекарства:Не влияют ИПП, антибиотики, висмут (так как определяются антитела, а не сам возбудитель). Однако, отмена ИПП/антибиотиков перед ФГДС все равно нужна, если серология – не единственный метод.
    • Курение:Не влияет существенно.
  1. Описание данного исследования
    Цель – выявить наличие или отсутствие инфекции Helicobacter pyloriв желудке. Используются различные методы:
  1. Инвазивные (требуют ФГДС):
    • Быстрый уреазный тест (CLO-тест, Campy-тест):Биоптат помещается в среду с мочевиной и индикатором pH. Если H. pylori присутствует, ее уреаза расщепляет мочевину на аммиак и CO2. Аммиак ощелачивает среду, вызывая изменение цвета индикатора (обычно с желтого на красный). Результат через несколько минут/часов.
    • Гистологическое исследование:Биоптаты фиксируются, окрашиваются специальными красителями (Гимза, Уорти-Старри, иммуногистохимия) и исследуются под микроскопом на предмет наличия бактерий. Позволяет оценить степень воспаления, атрофии, метаплазии, дисплазии.
    • Культуральный метод (бактериологический посев):Биоптат измельчается и высевается на специальные питательные среды. При наличии роста колоний H. pylori определяется их чувствительность к антибиотикам. Требует времени (до 7-14 дней), сложен, но дает информацию о чувствительности.
    • ПЦР (полимеразная цепная реакция) в биоптате:Обнаружение ДНК бактерии. Высокочувствительный и специфичный метод. Может определять гены вирулентности (CagA, VacA) и устойчивости к кларитромицину.
  2. Неинвазивные:
    • ¹³С- или ¹⁴С-мочевинный дыхательный тест (UBT):Пациент выпивает раствор меченой мочевины (¹³С — нерадиоактивный, безопасный; ¹⁴С — слаборадиоактивный, реже используется). Если в желудке есть H. pylori, ее уреаза расщепит меченую мочевину. Образовавшийся меченый CO2 попадает в кровь и выдыхается. Через определенное время (обычно 30 мин) измеряется концентрация меченого CO2 в выдыхаемом воздухе. Повышение – признак инфекции. Высокоточный метод для первичной диагностики и контроля эрадикации.
    • Иммунохроматографический тест на антиген H. pylori в кале:Обнаружение специфических белков (антигенов) бактерии в кале с помощью моноклональных антител. Простой, быстрый, недорогой метод. Точность зависит от качества тест-системы.
    • Серологические тесты (ИФА):Обнаружение антител (IgG, реже IgA, IgM) к H. pylori в крови. Указывает на факт инфицирования в настоящем или прошлом. Не подходит для контроля эрадикации сразу после лечения, так как антитела сохраняются месяцы и годы. Полезен для эпидемиологических исследований, при невозможности отменить ИПП или при кровоточащих язвах.
  1. Диагностика заболеваний
  • Хронический гастрит(антральный, фундальный, пангастрит).
  • Язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки.
  • MALT-лимфома желудка.
  • Аденокарцинома желудка.
  • Функциональная диспепсия(в части случаев ассоциирована с H. pylori).
  • Железодефицитная анемия неясного генеза.
  • Идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура (ИТП).
  1. Цель исследования (Подробно)
  • Первичная диагностика H. pylori-инфекции:При наличии симптомов диспепсии (боль/дискомфорт в эпигастрии, изжога, отрыжка, тошнота, раннее насыщение), при эндоскопических признаках гастрита/язвы, при отягощенном семейном анамнезе по раку желудка.
  • Контроль эрадикации (уничтожения) H. pylori:Проверка успешности проведенного лечения. Критически важен. Проводится не ранее чем через 4 недели после окончания антибиотикотерапии и через 2 недели после отмены ИПП. Используются только тесты, выявляющие активную инфекцию: UBT, тест на антиген в кале, гистология с окраской, ПЦР. Серология не используется для контроля эрадикации!
  • Диагностика причин рецидивирующей язвенной болезни.
  • Обследование перед длительной терапией НПВП(нестероидными противовоспалительными препаратами) у пациентов с риском язвообразования.
  • Скрининг и диагностика у пациентов с высоким риском рака желудка(семейный анамнез, хронический атрофический гастрит, состояние после резекции желудка по поводу рака).
  • Диагностика причин железодефицитной анемии или ИТПпри исключении других причин.
  • Эпидемиологические исследования.
  1. Что значат полученные результаты (Подробно)
  • Положительный результат (для UBT, теста на антиген в кале, быстрого уреазного теста, гистологии/ПЦР с обнаружением бактерий):Указывает на наличие активной инфекции H. pylori в желудке. Требуется консультация гастроэнтеролога для решения вопроса об эрадикационной терапии.
  • Отрицательный результат (для UBT, теста на антиген в кале, быстрого уреазного теста, гистологии/ПЦР без обнаружения бактерий):С высокой вероятностью активная инфекция H. pylori отсутствует. Важно: Отрицательный результат на фоне приема ИПП/антибиотиков/висмута может быть ложным. Необходимо убедиться, что подготовка была соблюдена.
  • Серология (Антитела IgG к H. pylori):
    • Положительный:Указывает на то, что организм встречался с H. pylori (текущая инфекция или перенесенная в прошлом). Не различает активную и перенесенную инфекцию. Сам по себе не является показанием к лечению без подтверждения активной инфекции другими методами или наличия серьезных показаний (язва в анамнезе, MALT-лимфома и др.).
    • Отрицательный:С высокой вероятностью инфицирования H. pylori никогда не было (или было очень давно, и титр антител упал). Ложноотрицательный возможен на ранней стадии инфекции (до выработки антител).
  • Гистология:Помимо факта наличия/отсутствия бактерий, дает детальную информацию о состоянии слизистой (степень и активность воспаления, атрофия, кишечная метаплазия, дисплазия), что важно для оценки риска рака.
  • Посев:Показывает рост колоний H. pylori (+) и предоставляет важнейшую информацию о чувствительности к антибиотикам, что позволяет выбрать оптимальную схему эрадикации, особенно при неэффективности предыдущего лечения.
  1. Факторы, влияющие на результат (Подробно)
  • Прием лекарств:Самая частая причина ошибок. Антибиотики, препараты висмута, ИПП, H2-блокаторы (особенно перед UBT, тестом на антиген, уреазным тестом, гистологией/ПЦР) – приводят к ложноотрицательным результатам. Строгое соблюдение сроков отмены!
  • Кровотечение (язвенное, эрозивное):Может снижать точность быстрого уреазного теста и гистологии (ложноотрицательный результат).
  • Атрофия слизистой желудка:При выраженной атрофии и кишечной метаплазии количество H. pylori может быть очень мало или бактерии могут отсутствовать в биоптате (ложноотрицательный результат), хотя инфекция в других отделах может сохраняться.
  • Рак желудка:Опухолевая ткань может быть не заселена H. pylori.
  • Недавно перенесенная эрадикационная терапия:Контроль проводится слишком рано (менее 4 нед после антибиотиков и 2 нед после ИПП) – ложноотрицательный результат.
  • Качество забора биоптатов:Биопсия должна браться из правильных мест (антрум, тело), достаточного размера и количества. Неправильный забор снижает чувствительность инвазивных тестов.
  • Качество доставки и обработки материала:
    • Для гистологии/посева/ПЦР: Неправильная фиксация, хранение, транспортировка биоптатов.
    • Для анализа кала: Длительное хранение при комнатной температуре, замораживание/размораживание (если не разрешено инструкцией теста).
    • Для UBT: Нарушение процедуры проведения (несоблюдение времени, неправильное дыхание в трубку).
  • Курение перед UBT:Может влиять на результат.
  • Серология:Перенесенная в прошлом инфекция (антитела сохраняются). Ранняя стадия инфекции (антитела еще не выработались — ложноотрицательный). Иммунодефицитные состояния (сниженный иммунный ответ — ложноотрицательный). Перекрестные реакции с другими бактериями (редко, ложноположительный).
  • Метод исследования:Чувствительность и специфичность разных методов варьируются (UBT и ПЦР в кале/биоптате — высокие; быстрый уреазный тест — зависит от нагрузки; серология — не для активной инфекции).

Заключение:
Диагностика Helicobacter pylori – обязательный этап при многих заболеваниях верхних отделов ЖКТ. Выбор метода зависит от клинической ситуации, доступности, необходимости оценки чувствительности к антибиотикам или контроля эрадикации. Строжайшее соблюдение правил подготовки, особенно отмены определенных лекарств, является залогом достоверного результата. Правильная интерпретация результатов врачом-гастроэнтерологом позволяет принять решение о необходимости и тактике эрадикационной терапии, направленной на устранение причины заболевания.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Ивашкин В.Т., Маев И.В., Лапина Т.Л. и др. Диагностика и лечение инфекции Helicobacter pylori у взрослых. Клинические рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации. Рос журн гастроэнтерол гепатол колопроктол. 2018;28(1):55-70. (Рус.)
  2. Маев И.В., Самсонов А.А., Андреев Н.Г. Заболевания желудка и двенадцатиперстной кишки. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2015. — Глава по H. pylori. (Рус.)
  3. Malfertheiner, P., Megraud, F., O’Morain, C. A., Gisbert, J. P., Kuipers, E. J., Axon, A. T., … & Leja, M. (2017). Management of Helicobacter pylori infection—the Maastricht V/Florence Consensus Report. Gut, 66(1), 6-30.
  4. Chey, W. D., Leontiadis, G. I., Howden, C. W., & Moss, S. F. (2017). ACG clinical guideline: treatment of Helicobacter pylori infection. The American journal of gastroenterology, 112(2), 212-239.
  5. Best, L. M., Takwoingi, Y., Siddique, S., Selladurai, A., Gandhi, A., Low, B., … & Gurusamy, K. S. (2018). Non‐invasive diagnostic tests for Helicobacter pylori infection. Cochrane Database of Systematic Reviews, (3).

Цитологическое исследование соскобов шейки матки и цервикального канала + бактериоскопия (Vag, CC, Ur)

  1. Краткая История
    Цитологическая диагностика новообразований зародилась в начале XX века, но настоящий прорыв произошел с развитием техник тонкоигольной аспирационной биопсии (ТАБ/FNA) в 1930-50-х годах, особенно благодаря работам Мартина и Эллиса в США и Лёпе в Европе. Изначально метод применялся для поверхностно расположенных образований. Развитие визуализирующих методов (УЗИ, КТ, рентгеноскопия, МРТ) в 1970-90-х годах позволило выполнять прицельную ТАБ глубоко расположенных органов (печень, поджелудочная железа, легкие, почки, предстательная железа, глубокие лимфоузлы) под контролем изображения. Это сделало цитологию пунктатов незаменимым малоинвазивным, быстрым и относительно недорогим методом первичной диагностики объемных образований практически любой локализации. Особое значение метод получил в диагностике заболеваний щитовидной железы, молочной железы и лимфатических узлов.
  2. Материал, используемый для исследования
  • Пунктат/Аспират:Материал, полученный путем прокола (пункции) образования тонкой иглой (диаметром обычно 20-25G) и аспирации (отсасывания) клеточного содержимого в шприц. Это Тонкоигольная Аспирационная Биопсия (ТАБ, FNA — Fine Needle Aspiration).
  • Материал может быть получен из:
    • Поверхностных образований:Пальпируемые узлы в щитовидной железе, молочной железе, слюнных железах, подкожные образования, увеличенные периферические лимфоузлы (шейные, подмышечные, паховые) – пункция выполняется без визуализации, под контролем пальпации.
    • Глубоко расположенных образований:Очаги в печени, поджелудочной железе, почках, легких (периферические), предстательной железе, забрюшинных и внутригрудных лимфоузлах, костных поражениях, мягкотканных опухолях – пункция выполняется под контролем УЗИ, КТ, рентгеноскопии или МРТ.
  • Вид препарата:
    • Мазки-отпечатки:Капля аспирата наносится на предметное стекло и аккуратно размазывается другим стеклом или делается отпечаток.
    • Жидкостная цитология:Весь аспират или его часть помещается в стабилизирующий раствор.
    • Центрифугат/клеточный блок:Из аспирата или промывной жидкости после ТАБ можно приготовить центрифугат или сформировать клеточный блок (в парафине), что позволяет делать дополнительные срезы и применять иммуноцитохимические исследования (ИЦХ).
  1. Как подготовиться к анализу (Подробно)
    Подготовка зависит от локализации пункции и вида контроля:
  1. Общие принципы:
    • Информированное согласие:Обязательно подписание информированного согласия на процедуру после объяснения врачом целей, хода и возможных рисков.
    • Анализы крови:Часто требуются коагулограмма (МНО, АЧТВ, фибриноген), общий анализ крови с тромбоцитами для исключения выраженных нарушений свертываемости крови.
    • Лекарства:Сообщить врачу о всех принимаемых лекарствах, особенно:
      • Антикоагулянты (Варфарин, Ксарелто, Эликвис, Прадакса и др.)и антиагреганты (Аспирин, Клопидогрел, Тикагрелор и др.): Решение об их временной отмене принимает врач, проводящий пункцию, на основании рисков кровотечения и тромбоза. Отмена обычно за 3-5 дней (антикоагулянты) или 5-7 дней (антиагреганты) до процедуры, но строго по согласованию с лечащим врачом/кардиологом.
      • Антигипертензивные препараты:Принимать как обычно.
    • Аллергия:Сообщить о любой аллергии (особенно на анестетики).
  2. Пункция под контролем УЗИ/КТ/МРТ (глубокие органы):
    • Голод:При пункции органов брюшной полости/забрюшинного пространства (печень, поджелудочная, почки, лимфоузлы) – голодание 6-8 часов (обычно с вечера). Утром не пить.
    • Легкий завтрак:При пункции щитовидной железы, поверхностных лимфоузлов, молочной железы – можно легкий завтрак.
    • Одежда:Удобная, свободная одежда.
  3. Пункция молочной железы:
    • Гигиена:Принять душ, надеть чистое белье.
    • Косметика:Не наносить кремы, дезодоранты, присыпки на область пункции.
  4. Пункция щитовидной железы:Обычно не требует специальной подготовки, кроме информированного согласия и отмены антикоагулянтов по согласованию. Иногда рекомендуют приходить с результатами УЗИ щитовидной железы.
  5. Пункция лимфоузлов:Зависит от локализации (см. выше).
  6. После процедуры:Соблюдать рекомендации врача (покой, холод на место пункции, наблюдение за возможным кровотечением/отеком). Избегать физических нагрузок в день процедуры.
  7. Описание данного исследования
    Это метод морфологической диагностики, при котором полученный при пункции клеточный материал исследуется под микроскопом врачом-цитологом после специальной обработки и окраски. Процедура ТАБ обычно занимает 10-30 минут. После местной анестезии (не всегда обязательна, особенно для поверхностных образований) врач вводит тонкую иглу в образование и выполняет несколько поступательных движений (для отделения клеток) и аспирацию шприцем. Полученный материал (крошечные фрагменты ткани, группы клеток, отдельные клетки) сразу же наносится на стекла для мазков или помещается в раствор. Препараты окрашиваются (чаще всего по Романовскому-Гимзе, Папаниколау, гематоксилин-эозином) и тщательно изучаются под микроскопом. Цитолог оценивает:
  • Клеточность препарата:Достаточно ли материала для заключения.
  • Характер клеток:Эпителиальные, лимфоидные, мезенхимальные, стромальные и др.
  • Морфологию клеток:Размер, форма, соотношение ядра и цитоплазмы, структура ядра (хроматин, ядрышки), особенности цитоплазмы.
  • Взаиморасположение клеток:Одиночные, группы, комплексы, структуры (папиллярные, фолликулярные и т.д.).
  • Фон препарата:Присутствие крови, воспалительных клеток, некроза, коллоида (в щитовидной железе), стромы.
    Цель – определить, является ли образование доброкачественным (воспаление, киста, аденома, гиперплазия) или злокачественным (рак, саркома, лимфома, метастаз), и по возможности уточнить тип опухоли.
  1. Диагностика заболеваний
  • Доброкачественные процессы:
    • Кисты (молочной железы, щитовидной железы, слюнных желез, почек, печени).
    • Воспалительные изменения (абсцесс, специфические воспаления — туберкулез, саркоидоз, тиреоидит, мастит).
    • Фиброзно-кистозная мастопатия.
    • Доброкачественные узлы/аденомы (щитовидной железы — коллоидный узел, аденома; слюнных желез — плеоморфная аденома).
    • Реактивная гиперплазия лимфоузлов.
    • Гранулематозные заболевания.
  • Злокачественные новообразования:
    • Карциномы (рак):
      • Молочная железа: Инвазивный протоковый, инвазивный дольковый, рак in situ и др.
      • Щитовидная железа: Папиллярный, фолликулярный, медуллярный, анапластический рак.
      • Легкие: Мелкоклеточный, немелкоклеточный (плоскоклеточный, аденокарцинома, крупноклеточный).
      • Поджелудочная железа: Аденокарцинома.
      • Печень: Гепатоцеллюлярная карцинома, холангиокарцинома.
      • Почки: Почечно-клеточный рак.
      • Предстательная железа: Аденокарцинома.
      • Слюнные железы: Мукоэпидермоидный рак, аденокистозный рак и др.
      • Метастазы рака различных локализаций в лимфоузлы и другие органы.
    • Лимфомы(Ходжкина и неходжкинские): Диагностика и типирование часто требуют дополнительных исследований (иммунофенотипирование, гистология).
    • Саркомы(злокачественные опухоли мягких тканей и костей): Диагностика затруднительна, часто требует гистологического подтверждения.
    • Меланома(метастазы).
  1. Цель исследования (Подробно)
  • Первичная диагностика пальпируемого или визуализированного (УЗИ, КТ, МРТ) объемного образования:Ответ на главный вопрос: доброкачественное или злокачественное?
  • Уточнение характера известного образования:Дифференциальная диагностика между кистой, воспалением, доброкачественной опухолью, злокачественной опухолью.
  • Подтверждение/исключение метастазов:При наличии первичной опухоли и выявлении подозрительных очагов в других органах или лимфоузлах.
  • Оценка состояния лимфоузлов:При подозрении на лимфопролиферативное заболевание (лимфома) или метастатическое поражение.
  • Контроль рецидива:При появлении нового образования в зоне ранее пролеченной опухоли.
  • Диагностика инфекционных/воспалительных заболеваний:При подозрении на абсцесс, специфическую инфекцию (туберкулез, токсоплазмоз), аутоиммунное воспаление (тиреоидит).
  • Получение материала для дополнительных исследований:При необходимости проведения иммуноцитохимии (ИЦХ) для определения типа опухоли, рецепторов (ER, PR, Her2/neu в раке молочной железы), мутаций (BRAF в меланоме и раке щитовидной железы), ПЦР на инфекции. Жидкостная цитология и клеточные блоки особенно удобны для этого.
  • Малоинвазивная альтернатива хирургической биопсии:Особенно у пациентов с высоким операционным риском или при труднодоступных образованиях.
  1. Что значат полученные результаты (Подробно)
    Заключение цитолога может иметь разную степень определенности:
  2. Адекватный материал / Неадекватный материал:Указывает, достаточно ли клеток для постановки диагноза. Неадекватность требует повторной пункции.
  3. Доброкачественный процесс:Описывает конкретный вид доброкачественных изменений (например, «Коллоидный узел щитовидной железы», «Фиброзно-кистозная мастопатия», «Реактивная гиперплазия лимфоузла», «Киста»). Обычно требует наблюдения или консервативного лечения.
  4. Атипия неопределенного значения / Подозрение на фолликулярное новообразование (для щитовидной железы — Bethesda III/IV):Изменения есть, но их недостаточно для уверенного диагноза рака. Требует повторной ТАБ, молекулярного тестирования или диагностической операции.
  5. Подозрение на злокачественность:Признаки злокачественности присутствуют, но их количество или выраженность недостаточны для абсолютного заключения. Требует гистологической верификации (операции).
  6. Злокачественное новообразование:Четко указан тип злокачественной опухоли (если возможно определить по цитологии), например:
    • «Картина соответствует папиллярному раку щитовидной железы».
    • «Клетки аденокарциномы».
    • «Метастатическая аденокарцинома» (с указанием предполагаемого первичного очага, если возможно).
    • «Клетки, характерные для низкодифференцированной карциномы».
    • «Признаки лимфопролиферативного заболевания» (требует гистологии и ИЦХ для уточнения типа лимфомы).
    • «Клетки плоскоклеточного рака».
  7. Лимфома:Предполагается или диагностируется лимфома, но для точного типирования почти всегда требуется гистологическое исследование лимфоузла и иммунофенотипирование.
  8. Описательный ответ:При сложных или редких случаях цитолог дает детальное описание картины без окончательного заключения, рекомендовав гистологическую верификацию.
    Важно: Цитологическое заключение – это морфологический диагноз. Окончательный диагноз, стадирование и выбор тактики лечения осуществляет лечащий врач (онколог, хирург, эндокринолог, гематолог) на основании цитологии, данных клиники, осмотра, результатов визуализации (УЗИ, КТ, МРТ, ПЭТ-КТ) и часто гистологического исследования после операции.
  9. Факторы, влияющие на результат (Подробно)
  • Опыт врача, выполняющего пункцию:Критически важен для получения адекватного и репрезентативного материала. Неудачная пункция – главная причина неинформативного результата («Материал неадекватный»).
  • Опыт врача-цитолога:Интерпретация цитологических препаратов требует высокой квалификации и специализации (например, цитолог, специализирующийся на щитовидной железе или молочной железе).
  • Локализация и размер образования:Мелкие (<1 см), глубокие, фиброзные или кистозные (с плотной стенкой и малым жидкостным компонентом) образования труднее пунктировать и получить достаточное количество диагностических клеток.
  • Характер образования:Опухоли с выраженным некрозом, фиброзом или воспалением могут давать скудный или неспецифический клеточный материал. Обильное кровотечение во время пункции разбавляет материал.
  • Качество приготовления препаратов:Неправильное нанесение мазка (толстые, раздавленные), плохая фиксация, дефекты окрашивания затрудняют оценку.
  • Использование жидкостной цитологии:Увеличивает вероятность получения адекватного материала и позволяет делать дополнительные исследования (ИЦХ, молекулярные), но требует специфических навыков у цитолога.
  • Предварительное лечение (лучевая, химиотерапия):Может значительно изменять морфологию клеток, затрудняя диагностику.
  • Ограничения метода:Цитология оценивает клетки, а не структуру ткани. Диагностика некоторых опухолей (особенно лимфом, низкодифференцированных карцином, сарком), определение инвазивного роста (в отличие от in situ) часто невозможны или затруднены и требуют гистологического исследования.
  • Ложноотрицательные результаты:Возможны, если игла не попала в опухолевый узел, взята только периферическая часть или некротические массы. При сомнении в результате требуется повторная пункция или биопсия.
  • Ложноположительные результаты:Редки, но возможны при выраженной воспалительной или репаративной атипии, которая может имитировать рак.

Заключение:
Цитологическое исследование пунктатов – это высокоинформативный, малоинвазивный и быстрый метод диагностики объемных образований. Он позволяет в большинстве случаев дифференцировать доброкачественный и злокачественный процесс, определить тип опухоли и избежать ненужных операций. Однако его точность напрямую зависит от квалификации врача, выполняющего пункцию, опыта цитолога, качества материала и правильной интерпретации результатов в контексте клинической картины. При сомнительных или неинформативных результатах всегда требуется дальнейшее обследование.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Зайратьянц О.В., Кактурский Л.В., Демидова А.В. Цитологическая диагностика опухолей и опухолеподобных поражений. — М.: Практическая медицина, 2014. — 496 с. (Рус.)
  2. Клинические рекомендации. Доброкачественные и злокачественные заболевания щитовидной железы. Под ред. И.И. Дедова, Г.А. Мельниченко. — М., 2020. — Разделы по диагностике. (Рус.)
  3. Ali, S. Z., & Cibas, E. S. (Eds.). (2020). The Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology: Definitions, Criteria, and Explanatory Notes (2nd ed.).
  4. Rosenthal, D. L., & Wojcik, E. M. (Eds.). (2015). The Paris System for Reporting Urinary Cytology.
  5. Schmidt, R. L., & Witt, B. L. (2017). Rapid on-site evaluation reduces needle passes in endoscopic ultrasound-guided fine-needle aspiration for solid pancreatic lesions: a systematic review and meta-analysis. Journal of the American Society of Cytopathology, 6(6), 222-230.

Сок предстательной железы, соскоб из уретры (АК + бактериоскопия)

  1. Краткая История
    Исследование секрета простаты и уретрального отделяемого имеет глубокие корни в урологии. Анализ простатического сока для диагностики простатита был впервые детально описан в начале XX века. Метод микроскопии нативного препарата (бактериоскопия) для выявления гонококков (возбудителей гонореи) и трихомонад применяется еще дольше. Сочетание исследования сока простаты и уретрального соскоба с цитологической оценкой (для выявления атипичных клеток) и бактериоскопией стало стандартом первичного обследования мужчин с симптомами нижних мочевых путей (ЛУТС), подозрением на простатит или инфекции, передающиеся половым путем (ИППП). Хотя современные методы (ПЦР, посев) обладают большей чувствительностью к конкретным возбудителям, микроскопия остается быстрым, недорогим и информативным скрининговым методом.
  2. Материал, используемый для исследования
  • Сок предстательной железы (секрет простаты):Жидкость, вырабатываемая предстательной железой. Получается путем массажа простаты через прямую кишку врачом-урологом. Секрет выделяется из уретры и собирается в пробирку или на предметное стекло.
  • Соскоб из уретры:Клетки и отделяемое со стенок мочеиспускательного канала (уретры). Получается путем введения в уретру (на 2-4 см) специального стерильного инструмента (ложечка Фолькмана, зонд, щеточка) и аккуратного соскоба эпителия. Материал наносится на предметное стекло.
  • Для каждого материала (сок простаты и уретральный соскоб) готовятся препараты для:
    • Цитологического исследования (АК):Оценка клеточного состава, поиск атипических клеток.
    • Бактериоскопии:Микроскопия нативного и/или окрашенного препарата для оценки лейкоцитов, микрофлоры, выявления возбудителей.
  1. Как подготовиться к анализу (Подробно)
    Правильная подготовка повышает достоверность:
  1. Воздержание:Рекомендуется половое воздержание в течение 2-3 дней до исследования (но не более 5-7 дней). Это способствует накоплению секрета в простате.
  2. Гигиена:Утром в день исследования принять душ, тщательно вымыть наружные половые органы и область ануса. Не использовать антибактериальное мыло глубоко в уретре.
  3. Очищение кишечника:Желательно опорожнить кишечник утром в день исследования (естественным путем или с помощью микроклизмы) для облегчения массажа простаты.
  4. Мочеиспускание:Рекомендуется помочиться за 1-2 часа до процедуры, чтобы удалить содержимое уретры, но не непосредственно перед массажем простаты.
  5. Лекарства:
    • Антибиотики, уроантисептики:Отменить минимум за 2-3 недели до исследования (по согласованию с врачом), иначе возможен ложноотрицательный результат.
    • Противовоспалительные:Отмена не обязательна, но сообщите врачу о приеме.
  6. Алкоголь:Исключить прием алкоголя за 2-3 дня до исследования.
  7. Острая стадия простатита:При остром бактериальном простатите массаж простаты противопоказан из-за риска распространения инфекции! Исследование проводится только после купирования острого воспаления.
  8. Психологический настрой:Процедура массажа простаты и уретрального соскоба может вызывать дискомфорт или психологическое напряжение. Важно быть готовым к этому и доверять врачу. Дыхание помогает расслабиться.
  9. Описание данного исследования
    Это комплексное микроскопическое исследование двух видов биоматериала:
  10. Исследование сока предстательной железы:
    • Макроскопия:Оценивается количество, цвет, консистенция, прозрачность, pH (в норме секрет опалесцирующий, беловатый, жидкий).
    • Микроскопия:
      • Лейкоциты:Количество в поле зрения (п.зр.). Норма: до 10-12 в п.зр. Повышение – признак воспаления (простатит).
      • Лецитиновые (липоидные) зерна:Мелкие блестящие зерна. Обильное количество – норма. Уменьшение – возможный признак нарушения функции простаты или воспаления.
      • Амилоидные тельца (конкременты):В норме отсутствуют или единичные. Большое количество может указывать на застой.
    • Атипические клетки (АК):Поиск клеток с признаками атипии или злокачественности (редко, рак простаты обычно диагностируют по PSA и биопсии).
    • Бактериоскопия:Поиск бактерий (кокков, палочек), грибов, трихомонад. Обнаружение большого количества бактерий, особенно внутриклеточно, может указывать на бактериальный простатит. Однако отрицательный результат не исключает инфекцию!
  11. Исследование соскоба из уретры:
    • Микроскопия:
      • Лейкоциты:Количество в п.зр. Норма в передней уретре: до 4-5 в п.зр. Повышение (уретрит) – признак воспаления (ИППП, неспецифический уретрит).
      • Эпителий:Плоский и цилиндрический. Умеренное количество – норма.
      • Слизь:Умеренное количество – норма.
    • Атипические клетки (АК):Поиск измененных клеток (признаки дисплазии, рака уретры – редко).
    • Бактериоскопия:Ключевой метод для скрининга ИППП:
      • Гонококки (Neisseria gonorrhoeae):Характерные парные бобовидные кокки, расположенные внутри лейкоцитов (внутриклеточно). Обнаружение – основание для диагноза гонореи (хотя ПЦР/посев точнее).
      • Трихомонады (Trichomonas vaginalis):Подвижные грушевидные микроорганизмы со жгутиками (в нативном препарате). Обнаружение – признак трихомониаза.
      • Кандиды (Candida spp.):Почкующиеся дрожжевые клетки и/или нити псевдомицелия. Признак кандидозного уретрита/баланопостита.
      • Прочая флора:Оценка соотношения палочек (нормальная флора) и кокков (условно-патогенные).
  1. Диагностика заболеваний
  • Острый и хронический простатит(бактериальный, абактериальный/синдром хронической тазовой боли — СХТБ).
  • Уретрит(гонорейный, трихомонадный, кандидозный, хламидийный (хламидии бактериоскопией не видны!), неспецифический бактериальный).
  • Доброкачественная гиперплазия предстательной железы (ДГПЖ)(косвенно, по изменению количества лецитиновых зерен, но не основной метод диагностики).
  • Везикулит(воспаление семенных пузырьков) — может влиять на состав секрета простаты.
  • Подозрение на ИППП(гонорея, трихомониаз).
  • Контроль леченияпростатита и уретрита.
  1. Цель исследования (Подробно)
  • Диагностика воспалительных заболеваний:Выявление признаков простатита (по лейкоцитозу в соке простаты) и уретрита (по лейкоцитозу в соскобе из уретры).
  • Скрининг на ИППП:Быстрое выявление гонококков и трихомонад в уретральном соскобе под микроскопом.
  • Дифференциальная диагностика простатита:Оценка количества лейкоцитов и лецитиновых зерен помогает различить воспалительный и невоспалительный СХТБ.
  • Оценка функционального состояния простаты:По количеству лецитиновых зерен.
  • Выявление атипических клеток:Скрининг на редкие опухоли уретры или простаты (не основной метод для рака простаты!).
  • Контроль эффективности лечения:Уменьшение лейкоцитоза, исчезновение возбудителей в контрольных анализах после курса терапии.
  • Установление причины мужского бесплодия:Хронический простатит может влиять на качество спермы.
  • Обследование при симптомах нижних мочевых путей (ЛУТС):Частые позывы, затрудненное мочеиспускание, боль в промежности, над лобком, в уретре.
  1. Что значат полученные результаты (Подробно)
    Сок простаты:
  • Лейкоциты:
    • < 10-12 в п.зр.:Норма или незначительное воспаление.
    • 10-25 в п.зр.:Умеренное воспаление (возможен хронический простатит).
    • > 25-30 в п.зр., особенно «сплошь» или «группами»:Выраженное воспаление (острый или обострение хронического простатита).
  • Лецитиновые зерна:
    • Обильно (> 10 млн/мл):Норма, хорошая функция простаты.
    • Умеренно:Может быть вариантом нормы или признаком застойных явлений.
    • Скудно или отсутствуют:Признак выраженного воспаления, нарушения функции простаты, застоя секрета.
  • Амилоидные тельца:Единичные – могут быть вариантом нормы. Много – признак застоя.
  • Эпителий:Небольшое количество – норма. Много – признак десквамации (слущивания) при воспалении.
  • Бактерии/Грибы/Трихомонады:Обнаружение значимого количества, особенно внутриклеточно, указывает на вероятную бактериальную/грибковую/трихомонадную природу простатита. Отсутствие не исключает инфекцию!
  • Атипические клетки:Обнаружение требует углубленного обследования (ПСА, ТРУЗИ, биопсия простаты).

Соскоб из уретры:

  • Лейкоциты:
    • < 4-5 в п.зр. в передней уретре:Норма.
    • > 5-10 в п.зр.:Признак уретрита (воспаления мочеиспускательного канала).
  • Эпителий:Умеренное количество – норма. Много – воспаление.
  • Слизь:Умеренно – норма. Обильно – воспаление.
  • Гонококки:Обнаружение характерных внутриклеточных диплококков – основание для предварительного диагноза гонореи (требует подтверждения ПЦР/посевом).
  • Трихомонады:Обнаружение подвижных трихомонад в нативном препарате – диагноз трихомониаза.
  • Кандиды:Обнаружение почкующихся клеток и псевдомицелия – признак кандидоза.
  • «Ключевые» клетки:Не характерны для мужчин (чаще у женщин при БВ).
  • Атипические клетки:Редко, требуют консультации уролога/онколога.

Важно: Результаты интерпретирует врач-уролог в комплексе с жалобами, данными осмотра (включая пальцевое ректальное исследование простаты), результатами других анализов (общий анализ мочи, бакпосев, ПЦР на ИППП, ПСА, УЗИ).

  1. Факторы, влияющие на результат (Подробно)
  • Техника забора материала:
    • Сок простаты:Неудачный массаж (не получен секрет), попадание мочи или спермы в образец. Слишком интенсивный массаж может привести к большому количеству лейкоцитов из-за травмы.
    • Уретральный соскоб:Неправильная глубина введения инструмента, недостаточное усилие при соскобе (мало материала), слишком травматичный забор (много крови, эпителия).
  • Подготовка пациента:Нарушение сроков воздержания, гигиены, прием антибиотиков.
  • Острое воспаление:При остром простатите забор секрета противопоказан. При остром уретрите забор соскоба может быть очень болезненным.
  • Сопутствующие заболевания:Стриктура (сужение) уретры затрудняет забор соскоба. Геморрой, анальная трещина делают массаж простаты болезненным или невозможным.
  • Время доставки в лабораторию:Особенно для нативного препарата на трихомонады (они быстро теряют подвижность). Материал должен быть доставлен и исследован максимально быстро.
  • Качество приготовления и окраски мазков.
  • Опыт лаборанта/врача-микроскописта:Умение идентифицировать гонококки внутри клеток, отличить трихомонад от артефактов, правильно подсчитать лейкоциты.
  • Ограничения бактериоскопии:Низкая чувствительность для многих возбудителей (хламидии, микоплазмы, уреаплазмы, многие бактерии при простатите не видны или неотличимы от нормальной флоры). Отрицательный результат не исключает инфекцию! Требуется ПЦР или бакпосев.
  • Психологический фактор:Сильный спазм сфинктеров у пациента из-за страха или дискомфорта может затруднить или сделать невозможным получение секрета простаты.

Заключение:
Исследование сока простаты и уретрального соскоба с микроскопией – важный начальный этап диагностики простатита, уретрита и скрининга на некоторые ИППП у мужчин. Оно позволяет быстро получить информацию о наличии и степени воспаления, заподозрить специфическую инфекцию. Однако метод имеет ограничения, и его результаты должны всегда оцениваться урологом в комплексе с другими данными. При подозрении на ИППП или для точной идентификации возбудителя простатита необходимы современные методы (ПЦР, посев).

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Лопаткин Н.А. (ред.) Урология. Национальное руководство. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2014. — Главы по простатиту, уретриту, ИППП. (Рус.)
  2. Переверзев А.С., Коган М.И. Инфекции и воспаления в урологии. — М.: Литтерра, 2015. (Рус.)
  3. Krieger, J. N., Nyberg, L., & Nickel, J. C. (1999). NIH consensus definition and classification of prostatitis. Jama, 282(3), 236-237.
  4. Workowski, K. A., Bachmann, L. H., Chan, P. A., Johnston, C. M., Muzny, C. A., Park, I., … & Bolan, G. A. (2021). Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recommendations and Reports, 70(4), 1-187. (Разделы по уретриту, гонорее, трихомониазу).
  5. Sharp, V. J., Takacs, E. B., & Powell, C. R. (2010). Prostatitis: diagnosis and treatment. American family physician, 82(4), 397-406.

Цитология мочи на АК

Введение
Цитологическое исследование мочи на наличие атипичных клеток (АК) – это высокоинформативный, неинвазивный скрининговый и диагностический метод, играющий ключевую роль в выявлении злокачественных новообразований и других патологий мочевыводящих путей. Основанный на микроскопическом анализе клеточного состава мочи, этот тест позволяет обнаружить изменения в морфологии клеток уротелия (слизистой оболочки мочевого пузыря, мочеточников, почечных лоханок) и других клеточных элементах, что является важным индикатором патологических процессов.

  1. Краткая История Цитологии Мочи
  • Истоки (XIX век):Первые попытки изучения клеток мочи под микроскопом относятся к середине XIX века. Однако систематическое применение цитологии для диагностики началось значительно позже.
  • Эра Папаниколау (1940-е):Настоящий прорыв в клинической цитологии связан с именем греческого врача Георгиоса Папаниколау. Хотя его основная работа была сосредоточена на цитологии шейки матки (разработка Пап-теста), его методы микроскопической оценки клеток заложили фундаментальные принципы, применимые ко всем видам цитологических исследований, включая мочу.
  • Развитие урологической цитологии (1950-1970-е):В послевоенные десятилетия цитология мочи начала активно развиваться как самостоятельное направление, прежде всего для диагностики рака мочевого пузыря. Пионерами в этой области выступили такие исследователи, как Меландер (Швеция) и Косс (США), которые детально описали цитоморфологические критерии злокачественных клеток в моче.
  • Совершенствование методик (1980-е — настоящее время):Появление жидкостной цитологии, автоматизированных систем приготовления препаратов (ThinPrep®, SurePath®) и анализа изображений, иммуноцитохимических методов (например, UroVysion FISH, тесты на ядерный матриксный белок NMP22, BTA) значительно повысило чувствительность и специфичность исследования, особенно для выявления опухолей низкой степени злокачественности. Стандартизация критериев оценки (Система Парижской классификации, 2016) улучшила воспроизводимость результатов между разными цитопатологами.
  1. Материал, Используемый для Исследования
  • Тип образца:Свежевыпущенная моча. Это основной и наиболее часто используемый материал.
  • Оптимальный объем:40-50 мл считается достаточным. Меньшие объемы могут не содержать репрезентативного количества клеток.
  • Критически важный фактор: Свежесть.Клетки в моче быстро дегенерируют (лизируются) под воздействием ферментов, изменений осмолярности и pH. Это приводит к артефактам и ложноотрицательным результатам.
  • Методы сохранения материала:
    • Немедленная доставка и обработка:Идеальный вариант. Образец должен быть доставлен в лабораторию в течение 1-2 часов после сбора и немедленно обработан.
    • Охлаждение:Если немедленная доставка невозможна, мочу можно хранить в холодильнике при +4°C до 24 часов. Это замедляет дегенерацию клеток.
    • Фиксация:Для предотвращения дегенерации и сохранения морфологии клеток в образец мочи добавляют фиксирующие растворы:
      • 50% Этанол:Часто используется в соотношении 1:1 с мочой.
      • Специализированные транспортные среды:Коммерческие среды для жидкостной цитологии (например, CytoLyt®, PreservCyt®) обеспечивают оптимальную фиксацию и позволяют использовать материал для дополнительных тестов (иммуноцитохимия, молекулярная диагностика). Это предпочтительный метод.
    • Альтернативные методы сбора (применяются реже и по особым показаниям):
      • Моча после массажа простаты:Для улучшения выявления рака простаты.
      • Промывные воды мочевого пузыря (Барбаж):Стерильный физиологический раствор вводится и аспирируется из мочевого пузыря через катетер. Содержит больше клеток, чем спонтанная моча.
      • Катетеризированная моча:Используется при невозможности самостоятельного мочеиспускания или для получения образца без контаминации из уретры. Риск травматизации клеток.
      • Моча из нефростомы или мочеточникового стента.
  1. Подробно — Как Подготовиться к Анализу
    Правильная подготовка пациента критически важна для получения качественного материала и достоверного результата:
  1. Время сбора:Наиболее информативна первая утренняя порция мочи после ночного сна. В ней накапливается максимальное количество слущенных клеток за несколько часов. Однако, если доставка в лабораторию в течение 1-2 часов невозможна, предпочтительнее собрать образец не ранее чем через 3 часа после предыдущего мочеиспускания (например, вторая утренняя порция) с последующей немедленной фиксацией или охлаждением.
  2. Гигиена:Тщательно вымыть наружные половые органы теплой водой с мылом без антисептиков (антисептики могут повредить клетки). Женщинам: раздвинуть половые губы, мыть спереди назад. Мужчинам: оттянуть крайнюю плоть (если есть) и вымыть головку полового члена. Тщательно смыть мыло.
  3. Метод сбора («чистая» средняя порция):
    • Начать мочеиспускание в унитаз.
    • Не прерывая струю, подставить стерильный контейнер и собрать среднюю часть струи (20-50 мл).
    • Закончить мочеиспускание в унитаз.
    • Зачем средняя порция?Первые миллилитры мочи смывают клетки и бактерии из уретры (контаминация), последние могут содержать меньше слущенных клеток из мочевого пузыря. Средняя порция наиболее репрезентативна для оценки уротелия мочевого пузыря.
  4. Контейнер:Использовать стерильный пластиковый контейнер с широким горлышком, специально предназначенный для сбора мочи. Не касаться внутренних стенок контейнера.
  5. Фиксация/Охлаждение:Если лаборатория предоставляет фиксирующую среду, немедленно после сбора перелить мочу в контейнер с фиксатором в указанном соотношении (обычно 1:1) и аккуратно перемешать. Если используется охлаждение, плотно закрытый контейнер с мочой поместить в холодильник (+4°C).
  6. Доставка:Доставить образец в лабораторию как можно скорее, соблюдая температурный режим (фиксированный образец — комнатная температура, нефиксированный — охлажденный). Максимальный срок доставки нефиксированного охлажденного образца — 24 часа.
  7. Важные ограничения:
    • Не сдавать анализ:
      • Во время менструации (из-за примеси крови и клеток эндометрия).
      • В течение 24-48 часов после цистоскопии, биопсии мочевого пузыря или катетеризации (из-за реактивных изменений клеток).
      • При остром цистите, уретрите, выраженной гематурии неясного генеза (воспалительные изменения могут маскировать или имитировать атипию).
    • Сообщить врачу:О принимаемых лекарствах (особенно цитостатики), недавних диагностических процедурах на мочевых путях, наличии мочевого катетера, стентов, симптомах (боль, жжение, частое мочеиспускание, кровь в моче).
  1. Описание Данного Вещества (Оцениваемые Клеточные Элементы)
    Цитолог анализирует все клеточные компоненты осадка мочи, уделяя особое внимание уротелиальным клеткам:
  1. Уротелий (Переходный эпителий):Основной объект исследования. Выстилает почечные лоханки, мочеточники, мочевой пузырь, проксимальную часть уретры. В норме в моче обнаруживаются единичные зрелые уротелиальные клетки:
    • Поверхностные («зонтичные»):Крупные, полигональные, обильная цитоплазма, часто двуядерные, ядро округлое/овальное с равномерно распределенным хроматином («пузырьковидное»).
    • Промежуточные:Меньшего размера, округлые или грушевидные.
    • Базальные/парабазальные:Мелкие, с высоким ядерно-цитоплазматическим соотношением, округлые, обычно не встречаются в норме в моче здорового человека, могут появляться при регенерации или воспалении.
  2. Клетки Плоского Эпителия:Происходят из дистальной уретры и влагалища (у женщин). Частая контаминант. Могут быть поверхностными (большие, полигональные, маленькое пикнотичное ядро) и парабазальными (меньше, округлые, более крупное ядро).
  3. Клетки Почечного Тубулярного Эпителия (КТЭ):В норме практически не встречаются. Появление даже единичных КТЭ – признак поражения канальцев почек (нефрит, ишемия, токсическое воздействие). Мелкие, округлые, с крупным ядром, низким ядерно-цитоплазматическим соотношением, часто с вакуолизированной цитоплазмой.
  4. Неэпителиальные клетки:
    • Лейкоциты (нейтрофилы, лимфоциты):Признак воспаления. Значительное количество требует исключения инфекции.
    • Эритроциты:Гематурия (кровь в моче) – важный симптом, требующий выяснения причины (опухоль, камень, воспаление, травма).
    • Макрофаги (гистиоциты):Могут быть признаком хронического воспаления или реакции на инородное тело (камень, стент).
    • Кристаллы, цилиндры, слизь, бактерии, дрожжи, паразиты:Имеют значение в контексте других заболеваний почек и мочевых путей.
  5. Атипичные клетки (АК):Клетки с отклонениями от нормальной морфологии. Ключевые признаки атипии:
    • Увеличение размера ядра.
    • Повышение ядерно-цитоплазматического соотношения (ЯЦС).
    • Гиперхромия ядра(избыточное окрашивание из-за повышенного содержания ДНК).
    • Неровность контура ядерной мембраны.
    • Грубая, глыбчатая, неравномерно распределенная структура хроматина.
    • Наличие ядрышек (макронуклеолы), особенно множественных и неправильной формы.
    • Многоядерность.
    • Патологические митозы.
    • Анизоцитоз (разный размер клеток) и анизокариоз (разный размер ядер).
    • Усиленная вакуолизация цитоплазмы (может быть признаком, но не специфична).Важно: Атипия может быть реактивной (на фоне воспаления, камней, лучевой/химиотерапии, катетеризации) или неопластической (злокачественной). Задача цитолога – дифференцировать эти состояния.
  1. Диагностика Заболеваний
    Цитология мочи на АК – ключевой инструмент для выявления:
  1. Уротелиальная Карцинома (Рак мочевого пузыря, мочеточников, почечных лоханок):Основное показание.
    • Высокая чувствительность и специфичность для карцином in situ (CIS) и высокозлокачественных (high-grade) опухолей:Эти опухоли легко слущивают атипичные и злокачественные клетки.
    • Более низкая чувствительность для низкозлокачественных (low-grade) опухолей:Клетки таких опухолей часто морфологически мало отличаются от нормальных или реактивно измененных клеток, реже слущиваются в мочу. Требует дополнения другими методами (цистоскопия с биопсией, FISH, NMP22).
  2. Плоскоклеточный Рак Мочевого Пузыря:Встречается реже уротелиального, часто связан с хроническим воспалением/раздражением (например, шистосомоз, камни, длительный катетер). Клетки имеют характерные для плоскоклеточного рака черты (кератинизация, «раковые жемчужины»).
  3. Аденокарцинома Мочевого Пузыря:Редкая опухоль. Клетки могут формировать железистые структуры, содержать слизь.
  4. Рак Предстательной Железы:Клетки аденокарциномы простаты могут попадать в мочу, особенно после массажа простаты. Требуется иммуноцитохимия для подтверждения (PSA, PSAP).
  5. Рак Почки (Почечно-клеточная карцинома):Клетки редко обнаруживаются в моче, так как опухоль расположена паренхиматозно. Появление почечных тубулярных эпителиальных клеток с выраженной атипией может навести на мысль, но недостаточно для диагноза.
  6. Доброкачественные состояния, сопровождающиеся атипией клеток (Реактивные изменения):
    • Воспаление (цистит, уретрит, пиелонефрит).
    • Мочекаменная болезнь (литиаз).
    • Последствия лучевой терапии или химиотерапии (цитостатики).
    • Внутрипузырная терапия (БЦЖ, химиотерапия).
    • Инструментальные вмешательства (цистоскопия, катетеризация, стентирование).
    • Вирусные инфекции (полиомавирус — клетки с крупными внутриядерными включениями — «decoy cells», аденовирус, герпес).
    • Эндометриоз мочевых путей.
    • Цистопатия, вызванная циклофосфамидом.
    • Нейрогенный мочевой пузырь.Цитолог должен дифференцировать реактивную атипию от неопластической.
  1. Подробно — Цель Исследования
    Основные цели назначения цитологии мочи на АК:
  1. Скрининг рака мочевого пузыря у пациентов высокого риска:
    • Курящие (главный фактор риска).
    • Лица с профессиональными вредностями (работа с анилиновыми красителями, ароматическими аминами, резиной, кожей, лакокрасочными материалами).
    • Пациенты с хроническим раздражением мочевого пузыря (хронический цистит, камни, шистосомоз, длительная катетеризация).
    • Пациенты с персистирующей микрогематурией неясного генеза.
    • Пациенты с отягощенным семейным анамнезом по раку мочевого пузыря.
    • Важно:Скрининг общей популяции с помощью цитологии мочи не рекомендован из-за недостаточной чувствительности к low-grade опухолям и экономической неэффективности.
  2. Первичная диагностика при симптомах:
    • Макрогематурия (видимая кровь в моче) — особенно безболевая.
    • Микрогематурия (кровь, выявляемая только лабораторно).
    • Раздражающие симптомы мочеиспускания (дизурия, учащенное мочеиспускание, императивные позывы), не поддающиеся стандартной терапии.
  3. Мониторинг пациентов с установленным раком мочевого пузыря в анамнезе:
    • Контроль после трансуретральной резекции опухоли (ТУР):Выявление рецидива или остаточной опухоли.
    • Контроль эффективности внутрипузырной терапии (БЦЖ, химиотерапия):Оценка ответа на лечение.
    • Долгосрочное наблюдение:Раннее выявление рецидивов, что позволяет снизить частоту инвазивных цистоскопий. Особенно важен для выявления CIS.
  4. Оценка верхних мочевых путей (лоханки, мочеточники):При подозрении на опухоль, особенно если методы визуализации (КТ, МРТ) дают сомнительный результат или когда эндоскопический доступ затруднен.
  5. Дифференциальная диагностика:Помощь в разграничении тяжелого воспаления/реактивных изменений от неоплазии.
  6. Оценка состояния уротелия при других патологиях:Мочекаменная болезнь, хронический цистит, после трансплантации почки (для выявления вирусных инфекций, реактивации BK-вируса).
  7. Подробно — Что Значат Полученные Результаты (Интерпретация)
    Современная интерпретация цитологии мочи чаще всего основывается на Парижской системе для отчетности по цитологии мочевыводящих путей (The Paris System for Reporting Urinary Cytology — TPS), разработанной для стандартизации и повышения клинической значимости заключений:
  8. Неудовлетворительный образец (Inadequate):
    • Причина:Недостаточное количество уротелиальных клеток, выраженная дегенерация клеток, выраженная контаминация (например, много чешуек, сперматозоидов, кристаллов), отсутствие фиксации.
    • Значение:Диагностически неинформативен. Требуется пересдача анализа с соблюдением всех правил подготовки и сбора.
  9. Отрицательный в отношении высокозлокачественного уротелиального рака (Negative for High-Grade Urothelial Carcinoma — NHGUC):
    • Описание:Клетки уротелия имеют нормальную морфологию или демонстрируют доброкачественные реактивные изменения (увеличение размера, двуядерность, небольшое увеличение ядрышек, вакуолизация цитоплазмы) на фоне воспаления, камней, лечения. Атипичных клеток, подозрительных на high-grade рак, нет.
    • Значение:Высокозлокачественный рак (HGUC) или карцинома in situ (CIS) маловероятны. Это хорошая новость. Однако результат НЕ исключает наличие low-grade уротелиальной опухоли, небольшой папилломы или других доброкачественных поражений. Клиническое ведение определяется симптомами и анамнезом.
  10. Атипиные уротелиальные клетки (Atypical Urothelial Cells — AUC):
    • Описание:Обнаружены уротелиальные клетки с умеренными отклонениями в морфологии, которые недостаточны для уверенной диагностики HGUC, но выходят за рамки типичных реактивных изменений. Например, некоторое увеличение ЯЦС, легкая гиперхромия, незначительная неровность ядерной мембраны, но без выраженных признаков злокачественности. Это наиболее субъективная и сложная категория.
    • Значение:«Желтый флажок». Указывает на неопределенность. Риск наличия HGUC/CIS или значительной дисплазии повышен по сравнению с NHGUC, но не гарантирован. Причины могут быть как неопластическими, так и реактивными (тяжелое воспаление, камень, после ТУР/БЦЖ). Требует обязательного клинического дообследования: повторная цитология через короткий интервал (иногда с использованием FISH или других тестов), тщательная цистоскопия с прицельной биопсией подозрительных участков. Риск последующего выявления HGUC у пациентов с AUC составляет примерно 15-40%.
  11. Подозрение на высокозлокачественный уротелиальный рак (Suspicious for High-Grade Urothelial Carcinoma — SHGUC):
    • Описание:Обнаружены клетки с выраженными атипическими изменениями, которые весьма подозрительны на HGUC или CIS, но количественно недостаточны или качественно не абсолютно убедительны для категоричного диагноза злокачественности. Например, несколько клеток с явными признаками злокачественности (высокое ЯЦС, гиперхромия, грубый хроматин), но их мало или они дегенеративно изменены.
    • Значение:«Красный флажок». Высокая вероятность наличия HGUC или CIS. Риск последующего гистологического подтверждения рака очень высок (более 60-90%). Требует немедленного и тщательного дообследования: цистоскопия с множественными биопсиями (включая биопсию из разных отделов мочевого пузыря и простатической уретры), исследование верхних мочевых путей (КТ-урография, ретроградная пиелография), возможно, FISH-тест. Рассматривается как показание к диагностической ТУР.
  12. Высокозлокачественный уротелиальный рак (High-Grade Urothelial Carcinoma — HGUC):
    • Описание:Обнаружено достаточное количество клеток с неоспоримыми цитоморфологическими признаками злокачественности, характерными для high-grade уротелиальной карциномы или карциномы in situ (CIS): резко увеличенное ЯЦС, выраженная гиперхромия, грубый глыбчатый хроматин, неровные ядерные мембраны, макронкулеолы, патологические митозы, анизоцитоз/анизокариоз.
    • Значение:Цитологическое подтверждение наличия высокозлокачественной уротелиальной карциномы. Является основанием для постановки диагноза и планирования дальнейшего лечения (ТУР с целью стадирования, радикальная цистэктомия, системная терапия). Точность цитологии в этой категории очень высока (>90%). Гистологическая верификация (биопсия) все равно необходима для определения стадии и точного гистологического типа.
  13. Другие злокачественные новообразования (Other Malignancies):
    • Описание:Обнаружены клетки, характерные для других видов рака: плоскоклеточного, аденокарциномы, рака простаты, почечно-клеточного рака, метастазов других опухолей в мочевые пути. Требуется описание характеристик этих клеток.
    • Значение:Указывает на наличие злокачественной опухоли не уротелиального происхождения. Требует тщательного поиска первичной опухоли и верификации гистологически.
  14. Доброкачественные изменения (дополняет NHGUC):Описание конкретных неопухолевых находок (тяжелое воспаление, вирусные цитопатические эффекты, почечные цилиндры, кристаллы, грибки, паразиты), которые могут объяснить симптомы пациента.

Важно: Результат цитологии никогда не является диагнозом сам по себе в изоляции. Он всегда интерпретируется лечащим врачом (урологом, онкологом) в контексте:

  • Клинической картины пациента (симптомы, анамнез).
  • Данных других обследований (общий анализ мочи, посев мочи, УЗИ, КТ/МРТ, цистоскопия).
  • Результатов предыдущих цитологических и гистологических исследований.
  1. Подробно — Факторы, Влияющие на Результат
    На точность и интерпретацию цитологии мочи на АК могут влиять многочисленные факторы:
  2. Качество образца:
    • Несвежесть образца:Дегенерация клеток – главная причина ложноотрицательных результатов и трудностей интерпретации.
    • Недостаточный объем:Мало клеток для анализа.
    • Неправильный сбор (не средняя порция):Обильная контаминация клетками из уретры/влагалища.
    • Отсутствие фиксации или неправильная фиксация.
  3. Технические факторы в лаборатории:
    • Метод приготовления препарата:Ручное приготовление мазка из осадка vs. жидкостная цитология (более равномерное распределение клеток, меньше артефактов, возможность делать дополнительные тесты).
    • Качество окрашивания:Плохое окрашивание затрудняет оценку морфологии ядра и цитоплазмы.
    • Опыт и квалификация цитопатолога/цитотехнолога:Субъективность в оценке атипии – ключевой фактор, особенно в категории AUC. Стандартизация (TPS) помогает снизить вариабельность.
  4. Клиническое состояние пациента:
    • Степень и стадия опухоли:Маленькие low-grade папиллярные опухоли редко дают положительную цитологию. CIS и инвазивные high-grade опухоли – чаще.
    • Локализация опухоли:Опухоли верхних мочевых путей (лоханка, мочеточник) могут не детектироваться, если нет обструкции и заноса клеток в мочевой пузырь.
    • Сопутствующие воспалительные/реактивные состояния:Цистит, уретрит, пиелонефрит, камни, катетер, недавняя ТУР/биопсия/БЦЖ-терапия – вызывают реактивную атипию, которая может имитировать неоплазию (ложноположительные результаты AUC/SHGUC) или маскировать злокачественные клетки.
    • Лечение:Химиотерапия (особенно циклофосфамид), лучевая терапия – вызывают выраженные реактивные и токсические изменения уротелия.
    • Вирусные инфекции (BK полиомавирус, аденовирус):Вызывают характерные цитопатические изменения, которые нужно дифференцировать от рака.
  5. Частота и метод сбора образцов:Анализ серии образцов (3 последовательных дня) повышает чувствительность, особенно для low-grade опухолей. Методы сбора с большим содержанием клеток (барбаж) также повышают чувствительность.
  6. Использование вспомогательных методов:
    • Отсутствие:Без иммуноцитохимии или FISH дифференцировка сложных случаев атипии (AUC) затруднена.
    • Применение:Иммуноцитохимия (маркеры CK20, p53, CD44s для HGUC vs. реакция) и FISH (UroVysion — выявление хромосомных аномалий) значительно повышают чувствительность и специфичность, особенно в категориях AUC и SHGUC, и для мониторинга.

Заключение
Цитология мочи на атипичные клетки остается незаменимым неинвазивным инструментом в арсенале уролога и онколога для диагностики и мониторинга злокачественных новообразований мочевыводящих путей, прежде всего высокозлокачественного уротелиального рака и карциномы in situ. Несмотря на ограничения в чувствительности к низкозлокачественным опухолям, ее высокая специфичность в отношении агрессивных форм рака, относительная простота выполнения и возможность многократного применения делают ее методом первого выбора при скрининге групп риска, обследовании пациентов с гематурией и динамическом наблюдении после лечения. Стандартизация отчетности по Парижской системе и внедрение современных технологий (жидкостная цитология, иммуноцитохимия, FISH) продолжают повышать диагностическую ценность этого исследования. Ключ к успеху – правильная подготовка пациента, безупречное выполнение сбора и транспортировки материала, высокий профессионализм цитологической лаборатории и комплексная интерпретация результатов врачом в контексте всей клинической картины.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Barkan, G. A., Wojcik, E. M., Nayar, R., Savic-Prince, S., Quek, M. L., Kurtycz, D. F. I., & Rosenthal, D. L.(2016). The Paris System for Reporting Urinary Cytology: The Quest to Develop a Standardized Terminology. Acta Cytologica, 60(3), 185–197. (Основополагающая статья по Парижской системе)
  2. Rosenthal, D. L., & Wojcik, E. M. (Eds.).(2016). The Paris System for Reporting Urinary Cytology. (Ключевое руководство)
  3. Перельман, В. М., Каприн, А. Д.(Ред.). (2018). Клиническая онкоурология: руководство для врачей. ГЭОТАР-Медиа. (Русский источник — разделы по диагностике рака мочевого пузыря, включая цитологию)
  4. Аляев, Ю. Г., Григорьев, Н. А., Чиненов, Д. В.(2016). Рак мочевого пузыря: современные аспекты диагностики и лечения. Литтерра. (Русский источник — содержит информацию о роли цитологии в алгоритме диагностики)
  5. Mally, A. D., & Mehrotra, R.(2021). Urinary Tract Cytology. In Comprehensive Cytopathology (4th ed., pp. 379-406). (Современный обзор в авторитетном руководстве по цитопатологии)
  6. WHO Classification of Tumours Editorial Board.(2022). Urinary and Male Genital Tumours. WHO Classification of Tumours Series, 5th ed., vol. 8. International Agency for Research on Cancer. (Современная гистологическая классификация, на которой базируется интерпретация цитологических признаков)

 

Цитологическое исследование соскобов шейки матки и цервикального канала

  1. Краткая История
    Цитологический скрининг шейки матки – одно из величайших достижений профилактической медицины XX века. Его основателем считается греческий врач Георгиос Папаниколау, который в 1928 году впервые предложил метод окрашивания мазков из влагалища и шейки матки для выявления раковых клеток (метод Папаниколау, Пап-тест). Однако широкое внедрение метода началось лишь в 1940-х годах после публикации его фундаментальной работы. Первоначально тест использовался для диагностики рака тела матки, но вскоре стала очевидной его высокая эффективность в выявлении предраковых и раковых изменений шейки матки. Бактериоскопическая оценка (микроскопия нативного мазка) всегда была неотъемлемой частью гинекологического обследования, позволяя быстро оценить состояние микрофлоры и выявить воспалительный процесс. Сочетание цитологического исследования (АК — атипические клетки) и бактериоскопии в одном мазке стало золотым стандартом профилактических осмотров, позволив резко снизить заболеваемость и смертность от рака шейки матки во всем мире. Современные методики, такие как жидкостная цитология, еще больше повысили точность диагностики.
  2. Материал, используемый для исследования
  • Цитология (АК):Соскоб клеток с поверхности эктоцервикса (влагалищной части шейки матки) и из эндоцервикса (цервикального канала). Материал наносится на предметное стекло (традиционный мазок) или помещается в специальный стабилизирующий раствор (жидкостная цитология).
  • Бактериоскопия:Отдельный мазок из заднего свода влагалища и/или цервикального канала, наносимый на предметное стекло. Иногда для бактериоскопии используется часть материала, взятого для цитологии.
  1. Как подготовиться к анализу (Подробно)
    Правильная подготовка критически важна для получения достоверного результата:
  2. Время сдачи:Оптимально – с 10-го по 20-й день менструального цикла (при 28-дневном цикле). Исключение – подозрение на рак (анализ берут в любой день). Через 48 часов после последнего полового акта.
  3. Воздержание:
    • Минимум 48 часовдо анализа: половые контакты, использование любых влагалищных форм лекарств (свечи, таблетки, кремы, гели), спринцевания.
    • Минимум 24 часадо анализа: проведение кольпоскопии, бимануального гинекологического осмотра, трансвагинального УЗИ.
  4. Лечение:Если вы проходите курс лечения вагинита или цервицита, сообщите об этом врачу. Анализ обычно сдается после завершения лечения и следующей менструации, для контроля излеченности. При остром воспалении с обильными выделениями анализ может быть малоинформативным.
  5. Гигиена:Накануне вечером провести обычный туалет наружных половых органов теплой водой с мылом. Утром в день анализа не спринцеваться и не подмываться глубоко.
  6. Менструация:Анализ не проводится во время менструального кровотечения. Оптимально – не ранее чем через 5 дней после окончания месячных и не позднее чем за 5 дней до начала следующих.
  7. Беременность:Анализ безопасен и проводится по показаниям на любом сроке. Обязательно предупредите врача о беременности.
  8. Дополнительно:Сообщите врачу о всех принимаемых лекарствах, особенно гормональных, и о перенесенных операциях на шейке матки (конизация, диатермокоагуляция).
  9. Описание данного исследования
    Это комплексное микроскопическое исследование, выполняемое в два этапа:
  10. Цитологическое исследование (Анализ на Атипические Клетки — АК):Основная цель – выявить аномальные (атипические) клетки шейки матки и цервикального канала. Лаборант или врач-цитолог тщательно изучает под микроскопом препарат, окрашенный специальным методом (чаще всего по Папаниколау, Романовскому-Гимзе или методом жидкостной цитологии). Оцениваются:
    • Количество и качество клеток (плоского эпителия с эктоцервикса, цилиндрического эпителия с эндоцервикса, метаплазированного эпителия).
    • Размер, форма, структура ядра и цитоплазмы клеток.
    • Наличие клеток с признаками дисплазии (CIN — цервикальная интраэпителиальная неоплазия) разной степени тяжести.
    • Признаки злокачественности (раковые клетки).
    • Клеточный состав фона (лейкоциты, эритроциты, микроорганизмы, элементы воспаления).
  11. Бактериоскопия (Микроскопия нативного мазка):Оценивается состав микрофлоры влагалища и цервикального канала:
    • Количество лейкоцитов (показатель воспаления).
    • Соотношение различных типов бактерий (палочки, кокки).
    • Наличие «ключевых» клеток (признак бактериального вагиноза).
    • Наличие дрожжевых грибов (кандид).
    • Наличие трихомонад (Trichomonas vaginalis).
    • Наличие гонококков (Neisseria gonorrhoeae) – хотя для точной диагностики ИППП требуется ПЦР/посев.
    • Количество эпителиальных клеток.
    • Слизь.
  1. Диагностика заболеваний
    Данное исследование является ключевым в диагностике:
  • Фоновых заболеваний шейки матки:Эктопия (псевдоэрозия), эктропион, лейкоплакия (простая), полипы цервикального канала, истинная эрозия.
  • Предраковых состояний (дисплазии):Цервикальная интраэпителиальная неоплазия (CIN I, II, III), плоскоклеточное интраэпителиальное поражение (LSIL, HSIL).
  • Злокачественных новообразований:Плоскоклеточный рак шейки матки, аденокарцинома.
  • Воспалительных процессов (цервицитов, кольпитов):
    • Неспецифический вагинит/цервицит (вызванный условно-патогенной флорой).
    • Бактериальный вагиноз (дисбиоз).
    • Кандидозный вульвовагинит (молочница).
    • Трихомонадный кольпит.
    • Гонорейный цервицит (предположительно, требует подтверждения).
  • Атрофических изменений(в постменопаузе).
  • Гормональных нарушений(косвенно, по клеточному составу).
  1. Цель исследования (Подробно)
  • Скрининг рака шейки матки:Это основная и самая важная цель. Раннее выявление предраковых изменений (дисплазий) и ранних стадий рака, когда лечение наиболее эффективно и малоинвазивно. Регулярное прохождение анализа (раз в 1-3 года в зависимости от возраста, факторов риска и предыдущих результатов) спасает жизни.
  • Диагностика воспалительных заболеваний:Выявление признаков воспаления (лейкоцитоз), определение возможной причины по характеру микрофлоры (бактериальный вагиноз, кандидоз, трихомониаз) для назначения адекватного лечения.
  • Контроль эффективности лечения:Оценка результатов проведенной терапии дисплазии, рака, воспалительных заболеваний (снижение лейкоцитов, нормализация флоры, исчезновение атипических клеток).
  • Оценка состояния слизистой:Выявление атрофических изменений (в постменопаузе), метаплазии.
  • Динамическое наблюдение:За фоновыми заболеваниями шейки матки, после оперативных вмешательств.
  • Выявление инфекций, передающихся половым путем (ИППП):Хотя бактериоскопия менее чувствительна, чем ПЦР или посев, она позволяет заподозрить трихомониаз и гонорею по характерной картине и наличию возбудителей.
  1. Что значат полученные результаты (Подробно)
    Цитология (АК):Результаты обычно предоставляются по системе Бетесда (TBS), которая является международным стандартом:
  • NILM (Negative for Intraepithelial Lesion or Malignancy):Отрицательный результат. Атипических или злокачественных клеток не выявлено. Могут описываться нормальные клетки, признаки воспаления, микроорганизмы.
  • ASC (Atypical Squamous Cells):
    • ASC-US (Atypical Squamous Cells of Undetermined Significance):Клетки плоского эпителия с неясным значением. Небольшие изменения, которые не позволяют четко отнести их к дисплазии. Требует дообследования (ВПЧ-тестирование, кольпоскопия) или повторного цитологического исследования через 6-12 мес.
    • ASC-H (Atypical Squamous Cells, cannot exclude HSIL):Атипические клетки, не позволяющие исключить HSIL. Более серьезные изменения, высока вероятность дисплазии высокой степени. Требует обязательной кольпоскопии с биопсией.
  • LSIL (Low-grade Squamous Intraepithelial Lesion):Плоскоклеточное интраэпителиальное поражение низкой степени. Соответствует легкой дисплазии (CIN I) и/или папилломавирусной инфекции (ВПЧ). Требует кольпоскопии и ВПЧ-тестирования.
  • HSIL (High-grade Squamous Intraepithelial Lesion):Плоскоклеточное интраэпителиальное поражение высокой степени. Соответствует умеренной и тяжелой дисплазии (CIN II, CIN III) и карциноме in situ. Высокий риск развития рака. Требует срочной кольпоскопии с биопсией и лечения.
  • AGC (Atypical Glandular Cells):Атипические клетки железистого эпителия (из цервикального канала или эндометрия). Могут указывать на дисплазию/рак цервикального канала, полип, гиперплазию или рак эндометрия. Требует срочного углубленного обследования (кольпоскопия, раздельное диагностическое выскабливание, УЗИ).
  • AIS (Adenocarcinoma in situ):Рак цервикального канала на месте (ранняя стадия).
  • SCC (Squamous Cell Carcinoma):Плоскоклеточный рак.
  • Adenocarcinoma:Аденокарцинома (рак железистого эпителия).
  • Другие злокачественные новообразования:Указывается тип.

Бактериоскопия: Описывается:

  • Степень чистоты влагалища (устаревшая, но иногда используется):I-IV степени. I-II – норма, III-IV – воспаление/дисбиоз.
  • Лейкоциты:Количество в поле зрения (п.зр.). Норма во влагалище — до 10-15 в п.зр., в цервикальном канале — до 30 в п.зр. Повышение — признак воспаления (вагинит, цервицит).
  • Микрофлора:Преобладание палочек (лактобациллы, Додерлейна) — норма. Появление большого количества кокков, смешанная флора — признак неспецифического воспаления или дисбиоза. «Ключевые» клетки — признак бактериального вагиноза.
  • Грибы (мицелий, почкующиеся клетки):Признак кандидоза.
  • Трихомонады:Признак трихомониаза.
  • Гонококки (внутри- и внеклеточно расположенные диплококки):Подозрение на гонорею (требует подтверждения).
  • Слизь:Умеренное количество — норма. Обилие — признак воспаления.
  • Эпителий:Умеренное количество — норма.
  1. Факторы, влияющие на результат (Подробно)
  • Нарушение подготовки пациентки:Половой акт, спринцевание, использование свечей/кремов, менструация на момент забора – приводят к загрязнению образца, ложноотрицательным или ложноположительным результатам цитологии, искажают картину бактериоскопии.
  • Техника забора материала:Неправильный забор (только с эктоцервикса без цервикального канала, или наоборот), недостаточное количество материала, неравномерное нанесение на стекло, плохая фиксация – снижают информативность цитологии.
  • Воспалительный процесс:Острое выраженное воспаление с большим количеством лейкоцитов и разрушенных клеток может затруднить оценку цитологической картины, маскируя атипию.
  • Атрофия слизистой (постменопауза):Истончение эпителия может дать картину, сходную с дисплазией низкой степени (ложноположительный результат ASC-US/LSIL), или затруднить забор адекватного материала.
  • Кровь:Примесь менструальной крови или кровоточивости шейки матки затрудняет микроскопию.
  • Предшествующее лечение:Недавно проведенная местная антибактериальная или противогрибковая терапия может временно нормализовать картину бактериоскопии, не устранив причину полностью (ложноотрицательный результат на инфекцию).
  • Опыт врача, берущего мазок:Правильность забора критична.
  • Опыт врача-цитолога/лаборанта:Интерпретация цитологических препаратов требует высокой квалификации и опыта. Субъективность оценки всегда присутствует.
  • Метод приготовления препарата:Жидкостная цитология обычно дает более качественный и информативный материал по сравнению с традиционным мазком на стекле.
  • Качество окрашивания и микроскопии:Неправильная техника окраски или плохое качество микроскопа влияют на визуализацию клеток и микроорганизмов.

Заключение:
Цитологическое исследование мазка с шейки матки и цервикального канала в сочетании с бактериоскопией – это фундаментальный метод гинекологической диагностики и профилактики. Его регулярное прохождение позволяет выявить грозные заболевания на самых ранних, излечимых стадиях, а также своевременно диагностировать и лечить воспалительные процессы. Строгое соблюдение правил подготовки и выбор квалифицированного медицинского учреждения для забора и исследования материала являются залогом точного результата.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Прилепская В.Н., Роговская С.И., Межевитинова Е.А. Патология шейки матки и генитальные инфекции. — М.: МЕДпресс-информ, 2019. — 432 с. (Рус.)
  2. Клинические рекомендации. Акушерство и гинекология. Под ред. В.И. Кулакова, В.Н. Серова. — 4-е изд., перераб. и доп. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2014. — Раздел «Дисплазии и рак шейки матки». (Рус.)
  3. Nayar, R., & Wilbur, D. C. (2015). The Bethesda System for Reporting Cervical Cytology: Definitions, Criteria, and Explanatory Notes (3rd ed.).
  4. Solomon, D., Davey, D., Kurman, R., Moriarty, A., O’Connor, D., Prey, M., … & Young, N. (2002). The 2001 Bethesda System: terminology for reporting results of cervical cytology. JAMA, 287(16), 2114-2119.
  5. Workowski, K. A., Bachmann, L. H., Chan, P. A., Johnston, C. M., Muzny, C. A., Park, I., … & Bolan, G. A. (2021). Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recommendations and Reports, 70(4), 1-187. (Разделы по вагинитам/цервицитам).

Активированное частичное тромбопластиновое время АЧТВ

Введение
В сложном оркестре системы гемостаза, обеспечивающей баланс между кровотечением и тромбозом, Активированное Частичное Тромбопластиновое Время (АЧТВ) занимает центральное место как один из самых распространенных и информативных скрининговых тестов. Эта проба позволяет оценить эффективность внутреннего и общего путей свертывания крови, играя критическую роль в диагностике нарушений гемостаза, контроле терапии и предоперационной подготовке пациентов. Понимание сути АЧТВ, факторов, на него влияющих, и интерпретации его результатов необходимо как для врачей, так и для пациентов, стремящихся осознанно подойти к своему здоровью.

  1. Краткая История
    История АЧТВ неразрывно связана с развитием понимания механизмов свертывания крови:
  • Ранние этапы (1930-е — 1940-е):Основы были заложены работами Армана Квика, разработавшего протромбиновое время (ПВ/МНО) для оценки внешнего пути. Параллельно велись поиски метода оценки «внутреннего» механизма запуска свертывания, зависящего от контакта крови с чужеродной поверхностью.
  • Концепция «Частичного» Тромбопластина (1950-е):В 1953 году группа исследователей под руководством Лангделла (Langdell), Грэма (Graham) и Бринкхауса (Brinkhous) ввела термин «частичный тромбопластин». Они обнаружили, что фосфолипидные экстракты (изначально из мозга кролика или соевых бобов), в отличие от «полного» тканевого тромбопластина, используемого в тесте Квика, активируют свертывание только в присутствии плазменных факторов внутреннего пути (VIII, IX, XI, XII, прекалликреина, высокомолекулярного кининогена). Этот реагент назвали «частичным тромбопластином».
  • Введение «Активации» (1960-е):Изначальный тест, известный как Частичное Тромбопластиновое Время (ЧТВ), имел существенный недостаток – высокую вариабельность и длительное время из-за зависимости от контактной активации в пробирке. Прорыв произошел, когда Проф. Роджерс (Rogers) и соавт. в 1961 году предложили добавлять в реагент активаторы контактной фазы (чаще всего каолин, эллагговую кислоту, кремнезем или сульфат церия). Это стандартизировало и значительно ускорило запуск внутреннего пути, сделав тест более воспроизводимым. Так появилось Активированное Частичное Тромбопластиновое Время (АЧТВ).
  • Стандартизация и автоматизация (1970-е — настоящее время):Метод быстро завоевал популярность. Развитие коагулометрии, появление автоматических анализаторов и стандартизация реагентов (особенно фосфолипидных компонентов и активаторов) позволили повысить точность, воспроизводимость и пропускную способность теста. Сегодня АЧТВ – рутинный, но незаменимый инструмент в любой клинико-диагностической лаборатории.
  1. Материал, Используемый для Исследования
    Для проведения анализа АЧТВ используется:
  2. Плазма, бедная тромбоцитами (ПБТ):Это основной материал. Кровь берется из вены пациента.
  3. Вакуумная пробирка с антикоагулянтом:Строго цитрат натрия в концентрации 2% или 3.8% (чаще 3.2%). Соотношение кровь:антикоагулянт обычно 9:1. Цитрат связывает ионы кальция (Ca²⁺), необходимые для свертывания, тем самым предотвращая коагуляцию in vitro.
  4. Процесс подготовки:
    • Кровь аккуратно смешивается с антикоагулянтом сразу после взятия (путем 5-7 плавных переворотов пробирки).
    • Пробирка центрифугируется при строго заданных условиях (как правило, 1500-2500 g в течение 10-15 минут) для получения плазмы с минимальным количеством тромбоцитов (< 10 000/мкл). Это критически важно, так как тромбоциты содержат фосфолипиды, которые могут исказить результат.
    • Полученная ПБТ аккуратно отбирается (без захвата клеточного слоя) и немедленно используется для анализа или временно хранится при строго контролируемых условиях (обычно 2-8°C, если анализ проводится в течение нескольких часов).
  5. Реагенты для проведения теста АЧТВ:
    • Активатор контактной фазы:Каолин, эллагговая кислота, сульфат церия, кремнезем. Стандартизирует запуск внутреннего пути.
    • Фосфолипиды (частичный тромбопластин):Эмульсия фосфатидилсерина, фосфатидилэтаноламина или их смесей, имитирующая фосфолипидную поверхность тромбоцитов.
    • Раствор хлорида кальция (CaCl₂):Добавляется в последнюю очередь для восстановления концентрации ионов кальция, инициируя собственно процесс свертывания в тестовой смеси.
  1. Как Подготовиться к Анализу АЧТВ
    Правильная подготовка пациента – залог достоверного результата АЧТВ. Нарушения на преаналитическом этапе – частая причина ошибок.
  1. Информирование врача:Обязательно сообщите лечащему врачу обо всех принимаемых лекарственных препаратах (особенно антикоагулянтах, гепарине, аспирине, НПВС, гормональных контрацептивах), биодобавках и витаминах (особенно витамин К). Обсудите необходимость их временной отмены перед анализом (НИКОГДА не отменяйте препараты самостоятельно без указания врача!).
  2. Голодание:Анализ сдается натощак. Рекомендуемый период голодания – 8-12 часов. В этот период разрешается пить только чистую негазированную воду.
  3. Ограничения накануне:
    • Пища:Избегайте жирной, жареной, острой пищи. Не употребляйте алкоголь за 24-48 часов до анализа.
    • Физическая нагрузка:Исключите интенсивные физические нагрузки и тренировки за 24 часа до сдачи крови. В день сдачи анализа избегайте быстрой ходьбы, бега по лестницам – придите в лабораторию заблаговременно и отдохните 10-15 минут перед кабинетом.
    • Курение:Рекомендуется не курить как минимум за 1-2 часа до исследования (в идеале – дольше).
    • Стресс:Постарайтесь минимизировать эмоциональное напряжение. Сильный стресс может повлиять на некоторые показатели гемостаза.
  4. Время сдачи:Оптимально сдавать кровь утром (обычно с 7:00 до 10:00), так как для многих показателей существуют суточные ритмы.
  5. Другие процедуры:Если в один день назначены несколько исследований (особенно физиотерапия, рентген, массаж), сдавайте кровь на АЧТВ до них.
  6. При беременности:Обязательно сообщите о беременности и ее сроке медицинскому персоналу, так как система гемостаза претерпевает физиологические изменения.
  7. Описание АЧТВ: Суть и Механизм
    АЧТВ – это время (в секундах), необходимое для образования фибринового сгустка в плазме крови после добавления специфических активаторов (контактного активатора и фосфолипидов) и ионов кальция.
  • Что оценивает АЧТВ?Тест преимущественно отражает функциональную активность факторов свертывания, участвующих во внутреннем (контактном) и общем путях коагуляционного каскада:
    • Внутренний путь (контактная фаза):Факторы XII (Хагемана), XI (предшественник плазменного тромбопластина), прекалликреин, высокомолекулярный кининоген (ВМК). Активируется при контакте крови с чужеродной поверхностью (активатор в реагентах АЧТВ имитирует это).
    • Общий путь:Факторы X (Стюарта-Прауэр), V (проакцелерин), II (протромбин), I (фибриноген) и XIII (фибрин-стабилизирующий).
  • Механизм проведения теста:
    1. В плазму пациента добавляется смесь активатора контактной фазы(напр., каолин) и фосфолипидов (частичного тромбопластина).
    2. Эта смесь инкубируется при 37°C. Активатор запускает контактную фазу, приводя к последовательной активации факторов XII -> XI -> IX. Фосфолипиды обеспечивают поверхность для сборки комплексов.
    3. Затем добавляется предварительно подогретый раствор хлорида кальция (CaCl₂). Ионы кальция необходимы для активации факторов и сборки ключевых комплексов:
      • Комплекс теназа(IXa + VIIIa + Ca²⁺ + фосфолипиды), который активирует фактор X -> Xa.
      • Комплекс протромбиназа(Xa + Va + Ca²⁺ + фосфолипиды), который превращает протромбин (II) в тромбин (IIa).
    4. Тромбин (IIa) расщепляет фибриноген (I) до мономеров фибрина (Ia), которые полимеризуются в фибрин-полимеры.
    5. Фактор XIIIa (активированный тромбином) стабилизирует сгусток, образуя поперечные связи между фибрин-полимерами.
    6. Анализатор детектирует момент образования сгустка (изменение оптической плотности или вязкости) и фиксирует время от добавления CaCl₂ до этого момента – это и есть АЧТВ.
    7. Диагностика Заболеваний (Когда и Зачем Назначают АЧТВ)
      АЧТВ является ключевым скрининговым и диагностическим инструментом при подозрении на различные нарушения гемостаза:
  1. Оценка системы свертывания крови:
    • Скрининг:Входит в стандартную коагулограмму наряду с протромбиновым временем (ПВ/МНО), тромбиновым временем (ТВ) и фибриногеном для общей оценки состояния гемостаза.
    • Предоперационное обследование:Для выявления скрытых нарушений свертываемости, которые могут привести к кровотечению во время или после операции.
    • Диагностика кровотечений неясного генеза:При частых носовых кровотечениях, образовании гематом, длительных кровотечениях после небольших травм, удаления зубов, операций, обильных менструациях.
  2. Диагностика дефицитов факторов свертывания:
    • Гемофилия А (дефицит фактора VIII):Классический пример – АЧТВ значительно удлинено.
    • Гемофилия В (дефицит фактора IX):Также выраженное удлинение АЧТВ.
    • Дефицит фактора XI (гемофилия С):Удлинение АЧТВ.
    • Дефицит фактора XII, прекалликреина, ВМК:Значительное удлинение АЧТВ, но обычно не сопровождается клиническими кровотечениями (парадокс). Может ассоциироваться с тромбофилией.
    • Дефицит факторов общего пути (X, V, II, фибриногена):Удлинение АЧТВ (и обычно также ПВ).
  3. Контроль антикоагулянтной терапии:
    • Нефракционированный гепарин (НФГ):АЧТВ – основной метод для контроля терапии НФГ. Гепарин усиливает действие антитромбина III, который ингибирует факторы IIa (тромбин), IXa, Xa, XIa, XIIa. Это приводит к значительному удлинению АЧТВ. Цель терапии – поддерживать АЧТВ в терапевтическом диапазоне (обычно в 1.5-2.5 раза выше контрольного значения лаборатории).
    • Прямые ингибиторы фактора Ха (ривароксабан, апиксабан, эдоксабан):В терапевтических дозах могут умеренно удлинять АЧТВ, но тест не используется для рутинного контроля их действия (из-за вариабельности и нелинейной зависимости). Может быть полезен в экстренных ситуациях для качественной оценки наличия препарата в плазме.
    • Прямые ингибиторы тромбина (дабигатран):Значительно удлиняют АЧТВ, но зависимость также нелинейна. Не является оптимальным для точного контроля, но может использоваться для грубой оценки присутствия препарата.
  4. Диагностика волчаночного антикоагулянта (ВА):ВА – это аутоантитела (часто при антифосфолипидном синдроме — АФС), которые, несмотря на название, предрасполагают к тромбозам. Они мешают сборке фосфолипид-зависимых коагуляционных комплексов (протромбиназы и теназы), что приводит к удлинению АЧТВ. АЧТВ является первичным скрининговым тестом для ВА. При подозрении проводятся подтверждающие тесты (коррекционные пробы с нормальной плазмой, тест с ядом гадюки Рассела — dRVVT).
  5. Диссеминированное внутрисосудистое свертывание (ДВС-синдром):В фазе гиперкоагуляции АЧТВ может быть укорочено, а в фазе гипокоагуляции/истощения – значительно удлинено (из-за потребления факторов и/или сопутствующей гепаринотерапии). Оценивается в комплексе с другими показателями (тромбоциты, фибриноген, D-димер, ПВ).
  6. Тяжелые заболевания печени:Печень синтезирует большинство факторов свертывания (кроме VIII и vWF). При печеночной недостаточности их синтез нарушается, что приводит к удлинению АЧТВ (и ПВ).
  7. Дефицит витамина К:Витамин К необходим для синтеза функционально активных форм факторов II, VII, IX, X. Дефицит приводит к удлинению АЧТВ (так как затрагивает IX и X) и, в большей степени, ПВ (так как затрагивает VII, который имеет самый короткий период полураспада).
  8. Цель Исследования АЧТВ
    Основные цели назначения анализа АЧТВ:
  9. Скрининг на нарушения внутреннего и общего путей свертывания:Выявление врожденных или приобретенных дефицитов факторов свертывания (VIII, IX, XI, XII, X, V, II, фибриногена), а также наличия ингибиторов (антител против этих факторов, например, при приобретенной гемофилии).
  10. Мониторинг терапии нефракционированным гепарином (НФГ):Основная клиническая цель. Подбор индивидуальной дозы гепарина и поддержание ее в терапевтическом диапазоне для эффективного предотвращения тромбозов при минимизации риска кровотечений.
  11. Выявление волчаночного антикоагулянта (ВА):Первичный скрининг антифосфолипидного синдрома (АФС), ассоциированного с тромбозами и акушерскими осложнениями.
  12. Оценка риска кровотечения перед инвазивными процедурами:В рамках предоперационной коагулограммы для выявления потенциально опасных нарушений гемостаза.
  13. Диагностика причин патологических кровотечений:Поиск возможных дефектов коагуляции при наличии соответствующей клинической картины.
  14. Оценка функции печени:Как индикатор нарушения синтеза факторов свертывания при тяжелых гепатопатиях.
  15. Качественная оценка присутствия прямых пероральных антикоагулянтов (ПОАК):Хотя и не является основным методом контроля, удлинение АЧТВ может указывать на наличие в плазме дабигатрана или (в меньшей степени) ингибиторов Ха, что может быть важно в экстренных ситуациях (например, перед срочной операцией, при кровотечении).
  16. Что Значат Полученные Результаты АЧТВ: Подробная Интерпретация
    Интерпретация АЧТВ всегдапроводится врачом с учетом клинической картины пациента, принимаемых препаратов, результатов других анализов (особенно ПВ/МНО, тромбоцитов, фибриногена) и референсных значений конкретной лаборатории, которые зависят от используемых реагентов и методики.
  • Референсный диапазон:Обычно составляет 25-35 секунд, но может незначительно варьировать (например, 23-37 сек). Крайне важно ориентироваться на нормы, указанные в бланке результата вашей лаборатории. Лаборатория также указывает свое контрольное нормальное значение (N) или диапазон для контрольной плазмы.
  • Нормальное АЧТВ (в пределах референсного диапазона):
    • Указывает на адекватную функцию факторов внутреннего и общего путей свертывания.
    • Не исключает:Наличие легких дефицитов некоторых факторов (особенно если их активность >30-40%), патологию тромбоцитов, сосудистых нарушений, гиперфибринолиз, наличие волчаночного антикоагулянта (в некоторых случаях ВА может не удлинять АЧТВ при использовании определенных реагентов), дефицит фактора XIII (не влияет на АЧТВ), прием антиагрегантов (аспирин, клопидогрель). Поэтому нормальное АЧТВ при наличии кровотечений требует дальнейшего обследования.
  • Удлиненное (замедленное) АЧТВ (выше верхней границы референса):
    • Дефицит одного или нескольких факторов свертывания внутреннего/общего пути:Гемофилия А (VIII), В (IX), С (XI), дефицит XII, прекалликреина, ВМК, факторов X, V, II, фибриногена (афибриногенемия, гипофибриногенемия). Степень удлинения часто коррелирует с тяжестью дефицита.
    • Наличие ингибиторов свертывания:
      • Специфические ингибиторы (антитела):Приобретенные антитела против факторов свертывания (чаще всего против VIII, реже IX, V, XI, XIII, vWF). Наиболее опасна приобретенная гемофилия А.
      • Волчаночный антикоагулянт (ВА):Аутоантитела, связывающиеся с фосфолипидами и фосфолипид-белковыми комплексами, мешающие работе коагуляционных комплексов.
    • Терапия антикоагулянтами:
      • Нефракционированный гепарин (НФГ):Основная причина контролируемого удлинения. Целевой терапевтический диапазон обычно в 5-2.5 раза выше контрольного значения лаборатории (или базового значения пациента до гепарина).
      • Прямые пероральные антикоагулянты (ПОАК):Дабигатран (ингибитор IIa) значительно удлиняет АЧТВ. Ингибиторы Ха (ривароксабан, апиксабан, эдоксабан) удлиняют АЧТВ умеренно и нелинейно. АЧТВ не используется для точного количественного контроля ПОАК.
    • Тяжелые заболевания печени:Нарушение синтеза факторов свертывания.
    • Дефицит витамина К:Влияет на факторы II, IX, X.
    • ДВС-синдром (фаза гипокоагуляции):Потребление факторов свертывания.
    • Массивное переливание крови:Разведение факторов свертывания.
    • Наличие гепарина в пробе:Контаминация образца гепарином (например, из катетера) даст ложное удлинение.
    • Парапротеинемии (миеломная болезнь и др.):Могут влиять на проведение теста.
    • Высокий гематокрит:Если гематокрит значительно повышен (>55%), относительное количество антикоагулянта (цитрата) в пробирке становится избыточным, что может ложно удлинять АЧТВ (и ПВ). Требует коррекции объема цитрата.
  • Укороченное (ускоренное) АЧТВ (ниже нижней границы референса):
    • Фаза гиперкоагуляции ДВС-синдрома:Повышенная активация свертывания.
    • Высокий уровень фактора VIII:Фактор VIII – острофазовый белок, его уровень резко повышается при воспалении, стрессе, беременности, приеме эстрогенов (включая ОК), некоторых онкозаболеваниях. Укорочение АЧТВ в этих ситуациях может указывать на повышенный риск тромбозов.
    • Наличие активированного фактора VIIa:Встречается редко, может быть при некоторых опухолях или введении рекомбинантного фактора VIIa.
    • Технические ошибки:Недостаточное наполнение пробирки (избыток цитрата относительно плазмы, что приводит к неполной нейтрализации кальцием), гемолиз пробы.
  1. Факторы, Влияющие на Результат АЧТВ
    На результат АЧТВ могут влиять многочисленные факторы, что требует строгого соблюдения правил преаналитики и аналитики:
Фактор Влияние на АЧТВ Причина/Механизм Как минимизировать
Преаналитические (до сдачи)
Несоблюдение голодания ↑ или ↓ Липемия (хилез) может мешать детекции сгустка; колебания факторов после еды. Строгое соблюдение 8-12 часов голодания.
Интенсивная физическая нагрузка ↓ (укорочение) Повышение уровня фактора VIII и фибриногена. Исключить нагрузки за 24 часа, отдых 10-15 мин. перед взятием.
Стресс ↓ (укорочение) Выброс катехоламинов → повышение фактора VIII. Минимизировать волнение перед анализом.
Курение ↓ (укорочение) Повышение уровня фактора VIII. Не курить минимум 1-2 часа до анализа.
Лекарства: Информировать врача о всех препаратах!
* Гепарин (НФГ, НМГ) ↑↑ (удлинение) Прямое антикоагулянтное действие. Согласовать время сдачи относительно инъекции.
* Прямые пероральные антикоагулянты (ПОАК) ↑ (удлинение) Ингибирование IIa (дабигатран) или Ха (ривароксабан и др.). Указать препарат и время приема.
* Витамин К-антагонисты (варфарин) Незначительное ↑ или ↔ Влияют преимущ. на внешний путь (ПВ/МНО). Могут слабо влиять на IX, X. Указать препарат.
* Высокие дозы глюкокортикоидов ↓ (укорочение) Повышение уровня фактора VIII. Указать препарат.
* Оральные контрацептивы (ОК) ↓ (укорочение) Повышение уровня фактора VIII, фибриногена. Указать прием ОК.
* Аспирин, НПВС ↔ Влияют на тромбоциты (агрегацию), не на плазменные факторы АЧТВ. Могут ↑ риск кровотечений при дефиците факторов. Указать препарат.
Аналитические (взятие, хранение, транспорт)
Неправильный забор крови: Обучение медперсонала, строгий протокол забора.
* Неполное наполнение пробирки ↑ (удлинение) Избыток цитрата → неполная рекальцификация. Строго соблюдать объем крови в цитратной пробирке (9:1).
* Травматичный забор, пена ↑ или ↓ Активация свертывания, гемолиз. Чистая пункция вены, плавное заполнение пробирки, избегать пенообразования.
* Забор из линии с гепарином ↑↑ (удлинение) Контаминация гепарином. Первые 5-10 мл крови из катетера сбрасывать, использовать пробирку для промывки или брать периферическую кровь.
* Неправильное смешивание ↑ (удлинение) Микросгустки → потребление факторов. Сразу после взятия — 5-7 плавных переворотов пробирки.
Задержка с центрифугированием ↑ (удлинение) Активация тромбоцитов → высвобождение фосфолипидов → укорочение АЧТВ in vitro; или потребление факторов. Центрифугировать в течение 1 часа (оптимально <30 мин) при 2-24°C.
Неполное удаление тромбоцитов ↓ (укорочение) Фосфолипиды тромбоцитов ускоряют реакцию. Строгое соблюдение режима центрифугирования для получения ПБТ. Повторное центрифугирование при необходимости.
Длительное хранение плазмы ↑ (удлинение) Деградация лабильных факторов (V, VIII). Анализировать ПБТ в течение 4 часов при 2-8°C. Заморозка (-70°C) при необходимости длит. хранения.
Гемолиз ↑ или ↓ Высвобождение внутриклеточных факторов и фосфолипидов. Аккуратный забор и транспортировка. Не использовать гемолизированную пробу.
Липемия (хилез) ↑ или ↓ Мешает оптической детекции сгустка. Ультрацентрифугирование для очистки плазмы (если метод анализа оптический).
Биологические
Высокий гематокрит (>55%) ↑ (удлинение) Относительный избыток цитрата в плазме. Корректировка объема цитрата по специальным формулам.
Беременность (поздние сроки) ↓ (укорочение) Физиологическое повышение факторов свертывания (особенно VIII, фибриногена) и снижение активности протеина S. Учитывать при интерпретации.
Новорожденные ↑ (удлинение) Физиологически низкий уровень витамин К-зависимых факторов и контактных факторов. Использование педиатрических референсов.

Заключение
Активированное Частичное Тромбопластиновое Время (АЧТВ) остается краеугольным камнем в диагностике нарушений гемостаза. Его способность оценивать внутренний и общий пути свертывания, а также являться основным инструментом для контроля гепаринотерапии, обеспечивает ему неослабевающую клиническую значимость. Понимание принципа метода, показаний к его назначению, правил подготовки пациента и факторов, влияющих на результат, критически важно для получения достоверных данных. Интерпретация результатов АЧТВ всегда должна быть комплексной, учитывающей клиническую картину, данные других лабораторных тестов и индивидуальные особенности пациента. Точность результата зависит от строгого соблюдения всех этапов – от подготовки пациента и правильного забора крови до выполнения анализа на высокоточном оборудовании.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список Литературы:

  1. Козинец Г.И., Погорельская Л.В., Шмаров Д.А. и др.Гемостаз: физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм патологии. // Руководство для врачей. — М.: Практическая медицина, 2019. (Русский)
  2. Баркаган З.С., Момот А.П.Диагностика и контролируемая терапия нарушений гемостаза. // М.: Ньюдиамед, 2008. (Русский)
  3. Hoffman, M., & Monroe, D. M. (2007).Coagulation 2006: A modern view of hemostasis. *Hematology/Oncology Clinics of North America, 21*(1), 1-11. doi:10.1016/j.hoc.2006.11.004 (Английский)
  4. Kitchen, S., Olson, J. D., & Preston, F. E. (Eds.). (2019).Quality in Laboratory Hemostasis and Thrombosis (3rd ed.). Wiley-Blackwell. (Английский — фундаментальное руководство по лабораторным аспектам)
  5. Favaloro, E. J., & Lippi, G. (2019).Coagulation update: What’s new in hemostasis testing? Thrombosis Research, 179, 1-15. doi:10.1016/j.thromres.2019.04.023 (Английский — обзор современных подходов, включая АЧТВ)

 

 

D-димер

Краткая История
Д-димер как клинически значимый маркер вошел в медицинскую практику относительно недавно. Открытие его роли связано с развитием понимания процесса фибринолиза – растворения кровяных сгустков. В 1970-х годах ученые установили, что при расщеплении стабилизированного фибрина (основного белка тромба) плазмином образуются специфические фрагменты, среди которых и присутствует Д-димер. Это уникальный продукт распада только поперечно-сшитого фибрина (стабилизированного фактором XIII), что делает его высокоспецифичным маркером активации как свертывания крови, так и последующего фибринолиза. Разработка высокочувствительных и специфичных иммунологических методов (в первую очередь иммуноферментного анализа — ИФА, а позже иммунотурбидиметрии и иммунохемилюминесценции) в 1980-1990-х годах позволила внедрить определение Д-димера в рутинную клиническую лабораторную диагностику. Сегодня это один из ключевых тестов в диагностике тромботических состояний, особенно тромбоэмболии легочной артерии (ТЭЛА) и глубокого венозного тромбоза (ГВТ).

Материал, используемый для исследования
Для определения уровня Д-димера используется:

  1. Плазма крови, стабилизированная цитратом натрия.Это стандартный антикоагулянт для коагулологических тестов (пробирка с голубой крышкой, обычно содержит 3.2% или 3.8% раствор цитрата натрия).
  2. Важно:Соотношение крови и цитрата должно быть строго 9:1. Неправильное наполнение пробирки исказит результат.
  3. Сбор материала:Кровь берется путем венепункции, с минимальным венозным стазом (нельзя долго пережимать руку жгутом). Первые несколько миллилитров крови, потенциально содержащие тканевой тромбопластин, обычно не используются для коагулологических тестов.
  4. Обработка:После взятия кровь необходимо аккуратно перемешать с антикоагулянтом (не встряхивать!), затем центрифугировать для получения бестромбоцитарной плазмы. Анализ следует проводить как можно быстрее (обычно в течение 1-4 часов). Если немедленное тестирование невозможно, плазму можно заморозить при -20°C или -70°C.

Как подготовиться к анализу
Правильная подготовка пациента критически важна для получения достоверного результата Д-димера:

  1. Время сдачи:Идеально сдавать кровь утром, натощак.
  2. Голодание:Рекомендуется не принимать пищу в течение 8-12 часов до исследования. Можно пить чистую негазированную воду.
  3. Физическая нагрузка:Следует избегать интенсивных физических нагрузок, стрессов и курения за 30-60 минут до сдачи крови, так как это может активировать систему гемостаза и повысить Д-димер.
  4. Лекарственные препараты:Обязательно сообщите врачу обо всех принимаемых лекарствах! Некоторые препараты могут влиять на результат:
    • Антикоагулянты (гепарин, варфарин, прямые оральные антикоагулянты — НОАК):Могут снижать уровень Д-димера, особенно на фоне эффективной терапии. Однако Д-димер все равно используется для мониторинга некоторых состояний на фоне антикоагуляции.
    • Тромболитики (стрептокиназа, алтеплаза):Значительно повышают Д-димер в процессе лечения.
    • Гормональные препараты (особенно эстрогенсодержащие — ОК, ЗГТ):Могут повышать уровень Д-димера.
  5. Недавние медицинские вмешательства:Операции, травмы, инфекции, обширные ожоги в течение последних нескольких дней/недель значительно повышают Д-димер. Сообщите врачу о таких событиях.
  6. Беременность:Уровень Д-димера физиологически повышается во время беременности, особенно в III триместре и после родов. Это необходимо учитывать при интерпретации.

Описание данного вещества
Д-димер – это специфический продукт распада фибрина. Рассмотрим процесс его образования:

  1. Образование фибрина:В ответ на повреждение сосуда или активацию свертывания растворимый фибриноген превращается в нерастворимые нити фибрина под действием тромбина.
  2. Стабилизация фибрина:Фактор свертывания XIIIa (активированный) сшивает соседние молекулы фибрина поперечными ковалентными связями, образуя прочный, стабилизированный сгусток (тромб).
  3. Фибринолиз:Когда необходимость в тромбе отпадает, система фибринолиза активируется. Основной фермент – плазмин – начинает расщеплять стабилизированный фибрин.
  4. Образование Д-димера:При расщеплении плазмином поперечно-сшитого фибрина образуются различные фрагменты. Д-димер представляет собой устойчивый фрагмент, состоящий из двух D-доменов соседних молекул фибрина, ковалентно связанных между собой поперечными сшивками (отсюда и название «D-димер»). Это означает, что наличие Д-димера в крови прямо указывает на то, что в организме произошло образование стабилизированного фибринового сгустка и его последующее растворение. Сам по себе Д-димер не обладает биологической активностью, он служит маркером произошедшего процесса тромбообразования и фибринолиза.

Диагностика заболеваний
Определение уровня Д-димера является ключевым лабораторным тестом для диагностики и исключения определенных тромботических состояний:

  1. Тромбоэмболия легочной артерии (ТЭЛА):Нормальный уровень Д-димера (ниже порога отсечки) с высокой вероятностью позволяет исключить ТЭЛА у пациентов с низкой или средней клинической вероятностью этого заболевания (используются специальные шкалы, например, шкала Уэллса).
  2. Глубокий венозный тромбоз (ГВТ):Аналогично ТЭЛА, нормальный Д-димер помогает исключить ГВТ у пациентов с низкой клинической вероятностью.
  3. Диссеминированное внутрисосудистое свертывание (ДВС-синдром):Повышение Д-димера является одним из обязательных лабораторных критериев диагностики ДВС-синдрома, отражая массивное образование и лизис микротромбов.
  4. Инсульт:Повышенный Д-димер может наблюдаться при ишемическом инсульте тромботической природы.
  5. Острый коронарный синдром (ОКС):Уровень Д-димера может повышаться при инфаркте миокарда.
  6. Тромбозы артерий:Могут приводить к повышению Д-димера.
  7. Мониторинг тромболитической терапии:Успешный лизис тромба тромболитиками сопровождается значительным повышением Д-димера, что является ожидаемым эффектом лечения.
  8. COVID-19:Выраженное повышение Д-димера является важным прогностическим маркером тяжелого течения и риска тромботических осложнений при COVID-19.
  9. Онкологические заболевания:Многие злокачественные опухоли являются протромботическими состояниями, и повышение Д-димера часто наблюдается у онкологических больных, ассоциируясь с худшим прогнозом.
    Важно: Д-димер – высокочувствительный, но низкоспецифичный маркер. Его повышение указывает на активацию коагуляции и фибринолиза, но не говорит о локализации или причине тромбоза. Диагноз ставится на основании комплекса клинических данных, анамнеза, инструментальных исследований (УЗИ вен, КТ-ангиография легких и др.) и других лабораторных тестов.

Цель исследования
Основные цели определения уровня Д-димера в клинической практике:

  1. Исключение Венозных Тромбоэмболических Осложнений (ВТЭО):Это главная цель. Использование Д-димера в комбинации с клинической оценкой вероятности (по шкалам, например, Уэллса или Женева) позволяет надежно исключить ТЭЛА или ГВТ у значительной части пациентов с подозрением на эти состояния без необходимости проведения дорогостоящих и потенциально опасных инструментальных исследований (например, КТ с контрастом). Это особенно ценно для пациентов с низкой клинической вероятностью.
  2. Диагностика ДВС-синдрома:Оценка уровня Д-димера является обязательным компонентом диагностических алгоритмов ДВС-синдрома.
  3. Оценка активности тромботического процесса:Повышение уровня Д-димера может указывать на активное тромбообразование при различных патологиях (тяжелые инфекции, сепсис, онкология, аутоиммунные заболевания).
  4. Прогнозирование риска и тяжести течения:Высокий уровень Д-димера при поступлении (например, при ОКС, инсульте, тяжелом COVID-19) ассоциирован с повышенным риском осложнений и худшим прогнозом.
  5. Мониторинг эффективности антикоагулянтной и тромболитической терапии:Снижение уровня Д-димера на фоне лечения может косвенно свидетельствовать об эффективности терапии (хотя рутинный мониторинг Д-димера для коррекции дозы антикоагулянтов не рекомендуется). Резкое повышение Д-димера при тромболизисе – ожидаемый маркер лизиса тромба.
  6. Дифференциальная диагностика:Помогает отличить состояния, связанные с тромбозом (повышен Д-димер), от состояний со сходной симптоматикой, но без активного тромбообразования (Д-димер в норме, например, при мышечной боли, не связанной с тромбозом).

Что значат полученные результаты
Интерпретация результата Д-димера всегда должна проводиться врачом в контексте конкретной клинической ситуации, симптомов пациента и оценки вероятности заболевания по клиническим шкалам.

  • Результат ниже порогового значения (отрицательный):
    • У пациентов с НИЗКОЙ или СРЕДНЕЙ клинической вероятностью ТЭЛА/ГВТ:С высокой степенью надежности (более 95-98%) исключает наличие тромбоэмболических осложнений. Дальнейшее дорогостоящее инструментальное обследование (КТ, УЗИ) обычно не требуется. Это наиболее ценное применение теста.
    • У пациентов с ВЫСОКОЙ клинической вероятностью ТЭЛА/ГВТ:Даже нормальный уровень Д-димера НЕ исключает диагноз. У таких пациентов отрицательный результат Д-димера не отменяет необходимости проведения подтверждающих инструментальных исследований (КТ-ангиография легких, компрессионное УЗИ вен). Это связано с тем, что при высокой претестовой вероятности чувствительность теста недостаточна для исключения диагноза.
    • Может наблюдаться при отсутствии активного тромбообразования и фибринолиза.
  • Результат выше порогового значения (положительный):
    • Указывает на наличие активного процесса образования и распада фибринового сгустка (тромба) где-то в организме.
    • НЕ подтверждает конкретный диагноз (например, ТЭЛА или ГВТ) сам по себе.Положительный результат лишь говорит о том, что тромбообразование и фибринолиз активированы.
    • Требует дальнейшего диагностического поискадля выяснения причины повышения: ТЭЛА? ГВТ? ДВС-синдром? Инфекция? Воспаление? Онкология? Послеоперационный период? Беременность? и т.д. Необходимы дополнительные обследования (УЗИ, КТ, рентген, анализы на онкомаркеры, воспалительные маркеры и т.п.) и тщательная оценка клинической картины.
    • Степень повышенияможет давать косвенную информацию о масштабе тромботического процесса (например, очень высокие значения характерны для ДВС-синдрома, массивной ТЭЛА, тяжелого сепсиса), но не является строго специфичной.

Пороговые значения: Лаборатории используют разные методы определения Д-димера (ИФА, иммунотурбидиметрия, иммунофлюоресценция и др.), поэтому референсные значения и пороги отсечки могут отличаться! Результат всегда сравнивается с порогом, установленным конкретной лабораторией для используемого метода. Обычно результат выдается в нг/мл FEU (фибриноген-эквивалентные единицы) или мг/л FEU (1 мг/л = 1000 нг/мл). Примеры порогов (уточняйте в своей лаборатории!):

  • Обычно < 500 нг/мл (0.5 мг/л FEU) считается нормальным для исключения ВТЭО у небеременных.
  • При беременности пороги значительно выше и зависят от срока.
  • Для пожилых людей (>50 лет) часто используют возраст-скорректированный порог (Возраст х 10 нг/мл, например, для 70 лет — 700 нг/мл) для повышения специфичности при исключении ВТЭО.

Факторы, влияющие на результат
Множество факторов может приводить к повышению уровня Д-димера, не связанному с острым венозным тромбозом:

  1. Физиологические состояния:
    • Беременность:Уровень прогрессивно повышается, начиная с I триместра, достигая максимума перед родами и в раннем послеродовом периоде (может превышать норму в 3-4 раза и более). Требует использования специальных, более высоких пороговых значений.
    • Пожилой возраст:Уровень Д-димера постепенно повышается с возрастом.
  2. Заболевания и патологические состояния:
    • Воспалительные процессы:Тяжелые инфекции, сепсис, системные воспалительные заболевания (ревматоидный артрит, воспалительные заболевания кишечника).
    • Злокачественные новообразования:Особенно распространенные, метастатические опухоли.
    • Сердечно-сосудистые заболевания:Острый инфаркт миокарда, инсульт, хроническая сердечная недостаточность, атеросклероз.
    • Заболевания печени:Нарушение синтеза и клиренса факторов свертывания и фибринолиза.
    • Заболевания почек:Почечная недостаточность.
    • Геморрагические состояния:Большие гематомы.
    • Травмы и хирургические вмешательства:Значительное повышение в послеоперационном периоде, пропорциональное объему операции.
    • Обширные ожоги.
    • ДВС-синдром.
    • Тяжелая анемия (особенно серповидно-клеточная).
    • Аутоиммунные заболевания.
  3. Лекарственные препараты:
    • Тромболитические препараты (стрептокиназа, алтеплаза):Вызывают резкое значительное повышение Д-димера в процессе лечения.
    • Эстрогенсодержащие препараты:Оральные контрацептивы, заместительная гормональная терапия.
  4. Технические факторы и преаналитика:
    • Неправильное соотношение кровь/цитрат в пробирке(самая частая ошибка на этапе взятия крови).
    • Гемолиз образца крови.
    • Липемия (хилез) образца.
    • Длительный венозный стазпри взятии крови.
    • Нарушение условий хранения и транспортировкиобразца (несвоевременное центрифугирование, замораживание/оттаивание).
    • Разные методы анализа:Результаты разных тест-систем и методов (ИФА, иммунотурбидиметрия и др.) могут не совпадать. Сравнивать результаты можно только при использовании одного метода и одной лаборатории.
    • Гетерофильные антителав крови пациента (редко) могут вызывать ложноположительные результаты в иммунологических тестах.

Заключение
Определение Д-димера – незаменимый инструмент в современной медицине, прежде всего для надежного исключения тромбоэмболических осложнений у пациентов с низкой и средней клинической вероятностью. Однако его положительный результат требует тщательной интерпретации врачом с учетом множества факторов, способных влиять на уровень этого маркера. Правильная подготовка пациента и соблюдение всех правил преаналитического этапа критически важны для точности результата.

Лаборатория Бойченко гарантирует точность и достоверность результатов благодаря современному оборудованию и высоким стандартам качества.

Список литературы:

  1. Weitz, J. I., Fredenburgh, J. C., & Eikelboom, J. W. (2017). A Test in Context: D-Dimer. Journal of the American College of Cardiology, *70*(19), 2411–2420. (Международный)
  2. Konstantinides, S. V., Meyer, G., Becattini, C., et al. (2020). 2019 ESC Guidelines for the diagnosis and management of acute pulmonary embolism developed in collaboration with the European Respiratory Society (ERS). European Heart Journal, *41*(4), 543–603. (Международный)
  3. Ройтберг Г.Е., Струтынский А.В. (2019). Внутренние болезни. Сердечно-сосудистая система. МЕДпресс-информ. (Раздел о лабораторной диагностике тромбозов). (Русский)
  4. Кириченко Л.Л., Козинец Г.И. (2015). Клиническая оценка лабораторных тестов. ГЭОТАР-Медиа. (Глава о маркерах гемостаза и фибринолиза, включая Д-димер). (Русский)
  5. Лихацкий Е.В., Фатенков О.В., Зайратьянц О.В. (2020). Роль Д-димера в диагностике и прогнозировании течения COVID-19. Кардиоваскулярная терапия и профилактика, *19*(3), 94–99. (Русский, актуальный по COVID-19)
Мы используем cookies для быстрой и удобной работы сайта. Продолжая пользоваться сайтом, вы принимаете условия обработки персональных данных